Bol. Micol. Lazarillo, 4. (2009) 1
LA BIODIVERSIDAD FÚNGICA Y
EL CAMBIO CLIMÁTICO
A
cometemos la tarea de editar y publicar un número más, y
ya es el 4, de nuestro Boletín Micológico Lazarillo, esto
conlleva un gran esfuerzo de muchas personas a las que
deseo agradecer, sinceramente, en nombre del Comité Editorial,
su trabajo; así como a Caja Duero, sin la cual no podríamos lle-
var a cabo nuestra labor micológica informativa y educativa.
En estos momentos en los que vivimos, acuciados por el
cambio climático que afecta a nuestro planeta Tierra, y que se-
gún el IPCC (Panel Intergubernamental para el Cambio Climá-
tico) -grupo de expertos que estudian el fenómeno- no es una
conjetura sino un hecho real, debemos ir pensando que, según
las previsiones, nuestra provincia camina hacia un clima de
características más áridas. Por ello, es muy posible que nues-
tra riqueza micológica se vea reducida, tal vez diezmada.
Por otro lado, se ha declarado al año 2010 como el Año Interna-
cional de la Biodiversidad, promovido por la UICN (Unión Interna-
cional para la Conservación de la Naturaleza) bajo el lema: “Cuenta
Atrás 2010”. Según datos que manejan los cientícos se calcula que
anualmente desaparecen de la faz de la Tierra entre 10.000 y 20.000
especies, algunos apuntan el cálculo aproximativo de 27.000. Las
causas responsables son las actividades humanas y el cambio climá-
tico, creándose una sinergia entre ambos factores que determinan
una pérdida de especies, espacios naturales y diversidad genética.
Así pues, no sólo corren peligro los grandes animales y las plantas
endémicas sino también cientos de miles de especies de insectos
y otros invertebrados y decenas de miles de especies de hongos.
Nosotros, desde la Sociedad Micológica Salmantina “Laza-
rillo”, podemos y debemos promocionar entre nuestros socios
y entre la ciudadanía salmantina, ideas y prácticas que pue-
dan contribuir a conocer y mantener la diversidad micológica
provincial, además de los otros grupos de seres vivos que nos
acompañan y que son auténticas obras de arte, comparables a
un cuadro de Velázquez, por ejemplo. En este sentido estamos
tratando de averiguar cuál es la biodiverdidad fúngica de la pro-
vincia, a través de estudios propios y ajenos; ya tenemos inven-
tariadas casi 1.000 especies de hongos productores de setas.
Solo me queda animaros a seguir con nuestro estudio, a
consumir setas con prudencia y en pequeñas cantidades y, so-
bre todo, a recolectar setas con sentido de responsabilidad
para que puedan disfrutar de ellas nuestros hijos y nietos.
Juan Manuel Velasco Santos
Coordinador del Boletín Micológico Lazarillo
PRESENTACIÓN
Bol. Micol. Lazarillo, 4. (2009)2
Co m i t e e d i t o r i a l
Fernando Bellido Bermejo
Andrés García García
José Ángel Hernández Melchor
Juan Carlos López Sanz
Juan Manuel Velasco Santos
Co o r d i n a d o r d e e s t e n ú m e r o
Juan Manuel Velasco Santos
Co l a b o r a d o r e s
Aurelio García Blanco
Gerardo J. García Cuesta
Prudencio García Jiménez
Carlos González Iglesias
José Ángel Hernández Melchor
Javier Mateos Holgado
Sergio Pérez Gorjón
Isabel de Santiago Sequeros
Juan Manuel Velasco Santos
di s e ñ o y m a q u e t a C i ó n
José Ángel Hernández Melchor
Cu b i e r t a
José Ángel Hernández Melchor
Fo t o g r a F i a C u b i e r t a
Bolbitius vitellinus (Foto: H. Antonio Gallego López )
di b u j o d e l l a z a r i l l o y C i e g o
Félix López Pulido
e
d i t a : Sociedad Micológica Salmantina “Lazarillo”
d
e p ó s i t o l e g a l : S. 1780-2007
i
s s n : 1886-466X
Bol. Micol. Lazarillo, 4. (2009) 3
Algunas especies raras o interesantes de Salamanca.
(García Blanco, A.) ............................................................................... 5
Sobre hidnos estipitados presentes en el parque natural de
“Las Batuecas-Sierra de Francia”. (Salamanca).
(Pérez Gorjón, S. & García Jiménez, P.) ............................................... 13
Consideraciones sobre epecies raras y/o durmientes:
el caso de Amanita lepiotoides en Salamanca.
( García Jiménez, P) .............................................................................. 21
Aportaciones corológicas de Macromicetos para
la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas.
(Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.). .............................23
Los Macromicetos en la provincia de Salamanca:
Primera actualización de la revisión bibliográca.
( Hernández Melchor, J.A. & Velasco Santos, J.M.) .............................41
Meripilus giganteus y el haya de Herguijuela de la Sierra,
crónica de una muerte anunciada.
(Pérez Gorjón, S.) .................................................................................. 51
Dietas y setas: declaraciones nutricionales y propiedades saludables.
(González Iglesias, C.) .......................................................................... 55
Hongos simbiontes: micorrizas.
(García Cuesta, G) ................................................................................ 67
Crónicas lazarillenses
(García Cuesta, G) ................................................................................ 82
Reseñas bibliográcas ................................................................................. 86
Normas de publicación para el Boletín Micológico “Lazarillo” ...............88
Índice
Bol. Micol. Lazarillo, 4. (2009)4
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009) 5
D
entro de la amplia geografía de nuestra Comunidad,
la provincia de Salamanca ha sido, durante muchos
años, una de las zonas a las que hemos dedicado ma-
yor atención y dedicación en nuestro trabajo de catalogación,
estudio y fotograado de setas.
En todo este tiempo, la variedad de especies estudiadas,
ha sido, como es de suponer por la riqueza y variedad de eco-
sistemas de esas entrañables tierras charras, muy numerosa
e interesante, habiendo disfrutado con el hallazgo de nume-
rosas setas novedosas para nosotros, y en algunos casos de
enorme interés desde el punto de vista cientíco.
No podemos olvidar los primeros contactos y salidas
al campo con nuestros queridos amigos de “Lazarillo”,
cuando por la Orbada ya íbamos en busca de una Peziza
violacea que salía bajo encinas y donde no había restos de
hogueras; y después con calma y al estudiarla al microsco-
pio, nos sorprendía al tratarse de la interesantísima Peziza
gerardii (= P. ionella).
Luchábamos por abarcar el inmenso océano que es la
disciplina de la Micología, con el Cetto nº 1 y poco más, ¿lo
recuerdas, amigo Carlos?, hoy, aunque difícil como siempre,
ya disponemos de una amplia bibliografía y ¡microscopio!,
el cual nos permite observar lo “invisible” de las setas.
Desde esos tiempos, hasta el día de hoy, ha habido una
comunión especial, con esa tierra, con sus gentes, y de forma
muy especial con los amigos de la Sociedad Micológica Sal-
mantina “Lazarillo”.
Para conocimiento de los acionados a la Micología,
paso revista a una serie de especies interesantes que forman
parte de la ora micológica salmantina.
DESCRIPCIÓN DE ESPECIES
Amanita eliae Quél.
Material estudiado: Salamanca. La Orbada. Bosque de
encinas, 27-V-2000, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo
& J.B. del Val, det. A. García Blanco. MA-Fungi 54415 Ex
AVM 1113.
Macroscopía. Sombrero: de 4-8 cm de diámetro, ini-
cialmente hemisférico, después convexo a plano-convexo.
Cutícula: separable, de colores claros blancuzcos o crema,
ligeramente más oscura hacia el centro y decorada con ve-
rrugas o placas (restos del velo). Margen netamente estriado.
Láminas: libres, blancas, apretadas y con lamélulas. Pie: de
12-15 x 1,3-1,5 cm, alargado, cilíndrico, esbelto, un poco
atenuado en la zona alta, blanco-parduzco y del mismo color
que el sombrero, ocoso en toda la supercie, con engrosa-
miento bulboso en la base. Está profundamente enterrado.
Anillo: blanco, desgarrado, perecedero y adherente a la parte
media del pie. Volva: friable y oconosa. Carne: blanca y
un poco coloreada en la parte del sombrero. Olor: no apre-
ciable. Sabor: dulce.
Microscopía. Esporas: cilíndrico-elipsoidales, de 9-15 x
6,5-9 µm, hialinas, lisas y no amiloides. Esporada blanca.
Hábitat: fructica en bosques de planifolios, sobre todo
de encinas y de castaños, de forma solitaria. Verano. Muy
rara.
Comestibilidad: por su rareza no hay experiencias sobre
el particular.
Observaciones: se puede confundir con A. vaginata por
su sombrero estriado pero ésta última carece de anillo. Asi-
Fig. 1. Amanita eliae Quél.
ALGUNAS ESPECIES RARAS O
INTERESANTES DE SALAMANCA
Aurelio García Blanco
Asociación Vallisoletana de Micología. Apartado 806. Valladolid
E-mail: agarciblanco@yahoo.es
re s u m e n : Se citan una serie de taxones recogidos en la provincia de Salamanca, describiéndose macro y mi-
croscópicamente. Se incluyen en las descripciones comentarios, fotografías e indicaciones sobre su hábitat.
p
a l a b r a s C l a v e : Basidiomycetes, Ascomycetes, corología, taxonomía, Salamanca, Península Ibérica.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009)6
García Blanco, A.
mismo, la morfología esporal es totalmente diferente, tanto
en tamaño como en forma.
Volvariella pusilla (Pers.: Fr.) Sing.[= Volvariella parvu-
la
(Wein.) Speg.]
Material estudiado: SALAMANCA. La Orbada. Claro
en bosque de encinas, 27-V-2000, leg. A. García Blanco, M.
Sanz Carazo & J.B. del Val, det. A. García Blanco. MA-Fun-
gi 54716 Ex AVM 1114.
Macroscopía. Sombrero: de 1-2,5 cm de diámetro, he-
misférico acampanado a plano convexo. Cutícula: blanca,
más oscura en el centro, sedosa, brillosa, estriada. Lámi-
nas: libres, blancas al principio, después de color rosa con la
maduración. Pie: de 2-3 x 0,3-0,4 cm, blanco, sedoso. Vol-
va: blanca a blanca cremosa, envainante, con 3-5 lóbulos.
Carne: insignicante. Olor: nulo. Sabor: fúngico.
Microscopía. Esporas: elipsoidales, de 5,5-7,5 x 3,5-5,5
µm, lisas, de pared gruesa. Esporada de color rosa.
Hábitat: en claros herbosos de encinares. Primavera.
Muy rara.
Comestibilidad: sin interés culinario.
Observaciones: en algunas publicaciones consulta-
das, aparecen fotografías en las que da la sensación de
ser sombreros de apariencia carnosa y totalmente lisos, lo
que nos hace dudar que correspondan a esta especie. La
que aquí exponemos, presenta sombreros estriados-acana-
lados, muy delicados y carentes prácticamente de carne,
que coinciden plenamente con los publicados en Flora
Agaricina Danica, Tomo I (J. E. LANGE ), 1935:114.
Tab. 68, gura C.
Lactarius subumbonatus Lindgren [= Lactarius cimi-
carius
ss. Quél.; Lactarius seriuus ss. Ricken]
Material estudiado: SALAMANCA. El Cabaco. Bosque
de robles en lugar muy húmedo, 06-X-2001, leg. A. García
Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val, det. A. García Blan-
co. MA-Fungi 54849 Ex AVM 1341 (como L. cimicarius).
Macroscopía. Sombrero: de 3-7 cm de diámetro, con-
vexo a aplanado con depresión central. Cutícula: opaca,
suavemente velutina, a veces parece lisa, de color marrón
oscuro a pardo negruzco, más oscuro hacia el centro. Mar-
gen más bien delgado. Láminas: adnatas a decurrentes,
apretadas, de color amarillo canela a ocre rosáceo. Pie: de
2-3 x 0,3-0,6 cm, cilíndrico, casi concoloro con el sombrero,
más oscuro en la base. Látex: blanco, uido, opalino, abun-
dante, de sabor dulce. Carne: de color ocre. Olor: débil
poco agradable, según algunos autores a chinches. Sabor:
dulce.
Microscopía. Esporas: globosas, de 6-8 µm, hialinas, ve-
rrugosas formando retículo, amiloides. Esporada blanquecina.
Hábitat: fructica bajo encinas y hayas en bosques mix-
tos y en terrenos de reacción ácida. Otoño. Muy rara.
Comestibilidad: sin interés culinario.
Observaciones: se trata de una especie controvertida
desde el punto de vista taxonómico, que ha dado lugar, se-
gún hayan sido los autores, a diversas interpretaciones. Se
caracteriza por su sombrero marrón oscuro a pardo casi ne-
gro, láminas con esfumaciones rosáceas y látex abundante
opalino.
Psathyrella caputmedusae (Fr.) Konr. & Maubl.
Material estudiado: SALAMANCA. El Cabaco. Tocón
de pino en zona muy húmeda y cubierta por helechos muy
altos, 01-XI-2000, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo &
J.B. del Val, det. A. García Blanco. Ejemplares expuestos du-
rante las Jornadas Micológicas de Valladolid y extraviados al
nalizar las mismas. La fotografía que se publica es el único
testimonio que hay de su hallazgo.
Macroscopía. Sombrero: de 4-6 cm de diámetro, de
acampanado a convexo, con el margen redondeado. Cutícu-
la: blanquecina, cubierta de escamas oconosas muy llama-
tivas, especialmente cuando es joven. Láminas: adherentes
a casi libres, ventrudas, pardo ocráceas a marrón oscuras con
la edad. Pie: de 6-8 x 0,5-0,8 cm, blanquecino, cubierto de
escamas del mismo color por debajo del anillo y por enci-
ma furfuráceo-harinoso. Anillo: blanco, doble, colgante, se
desprende en trozos fácilmente. Carne: frágil, blanquecina.
Olor: inodoro. Sabor: fúngico.
Fig. 2. Volvariella pusilla (Pers. Fr) Sing. Fig. 3. Lactarius subumbonatus Lindgren.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009) 7
Algunas especies raras o interesantes de Salamanca
Microscopía. Esporas: oblongo-elipsoidales, de 8-11 x
4-5 µm, lisas. Esporada marrón oscura.
Hábitat: fructica en tocones de pinos. Otoño. A prote-
ger por su rareza.
Comestibilidad: no comestible.
Observaciones: sobre la rareza de esta especie, comen-
tar que después de más de treinta años dedicados al estudio
de los hongos, con numerosos desplazamientos por toda la
geografía de nuestra Comunidad, solo la hayamos visto en
esta ocasión. En posteriores desplazamientos a la zona de la
recolección, no hemos tenido la suerte de volver a verla.
Plectania rhytidia (Berk.) Nannf.
Material estudiado: SALAMANCA. Miranda del Cas-
tañar. Sobre restos leñosos semienterrados de Eucalyptus
camaldulensis, 18-IV-2003, leg. A. García Blanco, M. Sanz
Carazo & J.B. del Val, det. A. García Blanco. MA-Fungi
55406 Ex AVM 1616.
Macroscopía. Ascocarpo: completamente negro, de 3-6
x 5-9 mm, cortamente estipitado. Inicialmente subgloboso o
acopado, cubierto por una pruina parda y nalmente calici-
forme, con la supercie externa brilosa, surcada longitudi-
nalmente. Margen acanalado. Himenio liso, profundamente
cóncavo, de color también negro. Pie: de desarrollo indeter-
minado, del que emergen un subículo negro aracnoide muy
abundante. Carne: relativamente delgada, de consistencia
gelatinosa, de color verde oscuro.
Microscopía. Ascósporas: elipsoidales, asimétricas, de
20-26 x 10-13 µm, decoradas por suras o rugosidades trans-
versales en número de 9-13, hialinas. Ascos: cilíndricos, oc-
tospóricos, uniseriados, no amiloides, de 390-450 x 9-13 µm.
Parásis: liformes, exuosas, de extremos tortuosos, rami-
cadas, pluriseptadas, con contenido pardo-amarillento.
Fig. 4. Psathyrella caputmedusae (Fr.) Konr. & Maubl.
Fig. 5. Plectania rhytidia (Berk.) Nannf.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009)8
García Blanco, A.
Hábitat: fructica principalmente sobre restos leñosos
humicados de Eucalyptus camaldulensis, y a veces entre
la hojarasca de Quercus suber. En grupos muy numerosos.
Finales de invierno y principio de primavera.
Comestibilidad: sin interés culinario.
Observaciones: su hábitat, casi exclusivo de eucalypta-
les, y las esporas con rugosidades laterales, facilitan su iden-
ticación.
Aunque localizamos abundantes colonias con numero-
sos ejemplares, es una especie muy rara, y hasta ahora, en
el herbario del Real Jardín Botánico, solo hay dos pliegos
nacionales depositados allí, entre ellos el material de este
hallazgo.
Tuber maculatum Vittad.
Material estudiado: SALAMANCA. Miranda del Cas-
tañar. Bajo madroños, 18-IV-2003, leg. A. García Blanco,
M. Sanz Carazo & J.B. del Val, det. A. García Blanco. MA-
Fungi 55445 Ex AVM 1625.
Macroscopía. Ascocarpo: de 1-3 cm de diámetro, con
forma más o menos globosa regular. Peridio: ligeramente
pubescente, con la maduración liso, de coloración variable,
de joven blanco terroso, después va tomando coloraciones
ocráceas y nalmente pardo rojizo. Gleba: dura, compacta,
de joven blanquecina, con la maduración va tomando tona-
lidades ocre rojizas, recorrida por venas sinuosas de color
blanco. Olor: no apreciable en los ejemplares jóvenes, des-
pués caseoso. Sabor: ligueramente amargo.
Microscopía. Ascósporas: elipsoidales, de 28-35 x 18-
27 µm, con retículo uniforme de mallas poligonales. Ascos:
subglobosos, sésiles o cortamente pedunculados, con 1-5 es-
poras, de hasta 120x100 µm.
Hábitat: fructica, de forma hipogea, asociada a encinas
principalmente, aunque como en este caso, también asociado
a madroños. Invierno y primavera. Raro o difícil de localizar.
Comestibilidad: sin interés culinario.
Observaciones: para la determinación de este tipo de hon-
gos, siempre es necesario hacer un detallado estudio micros-
cópico. Pertenece al “complejo” del T. puberulum, en el que
la forma y tamaño de las mallas del retículo esporal son muy
importantes, así como la estructura de las hifas del peridio.
Zelleromyces giennensis Moreno-Arroyo, Gómez & Ca-
longe.
Material estudiado: SALAMANCA. Miranda del Casta-
ñar. Asociado a Cistus ladanifer, 18-IV-2003, leg. A. García
Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val, det. A. García Blan-
co. MA-Fungi 55463 Ex AVM 1615.
Fig. 6. Tuber maculatum Vittad.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009) 9
Algunas especies raras o interesantes de Salamanca
Macroscopía. Carpóforos: de 1-2,5 cm, de globosos
irregulares a tuberiformes, rayados o lobulados, con super-
cie lisa y opaca, de color inicialmente blanquecino que pro-
gresivamentese va transformandose en amarillento-alutáceo.
Peridio: no, de cerca de 0,2 mm. Gleba: con estructura
en celdillas con forma laberíntica dispuestas irregularmente,
primero blanquecina y en la madurez amarillenta; columela
ausente.
Microscopía. Esporas: elipsoidales, raramente ovoides,
de 10-13 x 7-9 µm incluyendo la ornamentación, hialinas,
fuertemente amiloides, con un perisporio constituido por
crestas continuas o interrumpidas que forman un retículo in-
completo.
Hábitat: fructica, de forma hipogea, en jarales y bosques
de Pinus halepensis mezclado con jaras. Invierno-primavera.
Muy raro o difícil de localizar.
Comestibilidad: sin interés culinario.
Observaciones: las hifas laticíferas del peridio, la ausen-
cia de esferocistos en la trama y las esporas subreticuladas
son caracteres típicos del género Zelleromyces. Este hallazgo
ha sido el primero para Castilla y León.
Alpova rubescens (Vittad.) Trappe. [= Melanogaster
rubescens
(Vittad.) Tul. & Tul.].
Material estudiado: SALAMANCA. Miranda del Cas-
tañar. Plantación de Eucalyptus camaldulensis, 18-IV-2003,
leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val, det. A.
García Blanco. MA-Fungi 55282 Ex AVM 1620.
Macroscopía. Carpóforo: tuberiforme, de 1,1 x 0,8 cm
recubierto por un peridio aeltrado, pardo castaño o pardo
rojizo, muy adherido, no despegable, con un espesor muy
pequeño. Gleba: dispuesta en lóculos o nichos gelatinosos
de 0,5 a 1 mm individualizados o conuyentes, de color
Fig. 7. Zelleromyces giennensis Moreno-Arroyo, Gómez & Calonge.
Fig. 8. Alpova rubescens (Vittd.) Trappe.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009)10
García Blanco, A.
pardo castaño, pardo rojizo, casi negruzcos con el tiempo
y tras exposición al aire, separados por un tejido estéril de
consistencia y aspecto suberoso, inicialmente algodonoso y
blanquecino, que vira a un tono amarillento al ser seccio-
nado y que al cabo de unos minutos se vuelve pardo rojizo;
columela ausente.
Microscopía. Esporas: estrechamente elipsoidales, con
contorno irregular algo noduloso, de 9-15 x 3,5-5 µm, ama-
rillentas, lisas, no cianólas, con o sin pequeñas gútulas in-
ternas, sin poro germinativo.
Hábitat: fructica en bosques de planifolios, encinas,
robles, castaños y hayas entre otros. Primavera. Muy rara o
difícil de localizar.
Comestibilidad : sin interés culinario.
Observaciones: aunque habitualmente fructica en otros
hábitat, en esta ocasión ha sido localizada en plantación de
Eucalyptus camaldulensis.
Presenta un aspecto que recuerda a un Melanogaster, en
cuya familia estuvo incluida. Posteriormente fue incluida en
la familia Rhizopogonaceas, por presentar una morfología
esporal más propia de ésta (TRAPE, 1975).
Alpova diplophloeus (Séller & Dodge) Trappe, tiene un as-
pecto externo muy parecido, pero fácil de diferenciar al microsco-
pio, ya que presenta esporas mucho más pequeñas: 4-7 x 2-3 µm.
Boletus fetchneri Velen.
Material estudiado: SALAMANCA. La Orbada. En zona
con abundantes jaras en la periferia del encinar, 19-X-2002,
leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val, det. A.
García Blanco. MA-Fungi 55295 Ex AVM 1519.
Macroscopía. Sombrero: de 6-15 cm de diámetro, he-
misférico al principio, después convexo. Cutícula: adhe-
rente, namente furfurácea, después lisa, seca, de colora-
ción variable, ocráceo con reejos rosáceos, ocre grisáceo,
o pardo ocráceo, cubierto de una na capa pruinosa en los
ejemplares muy jóvenes. Margen un poco excedente. Pie:
de 4-11 x 2-5 cm, robusto, claviforme, ensanchado en la
base pero terminando algo radicante, de color amarillo páli-
do con no retículo concolor, en la zona intermedia presen-
ta una característica franja circular de color rosa ± intensa.
Poros: redondos, pequeños, amarillos, después oliváceos,
al tacto azulean un poco. Tubos: de hasta 2 cm, adherentes
o ligeramente decurrentes por un diente, concolor a los po-
ros, al corte azulean un poco. Carne: compacta en el som-
brero, brosa en el pie, amarilla, rosada bajo la cutícula, al
corte vira a azul muy débilmente. Olor: fúngico. Sabor:
agradable.
Microscopía. Esporas: fusiformes, de 10-16 x 4-5,5
µm, amarillentas, lisas. Esporada pardo-olivácea.
Fig. 9. Boletus fetchneri Velen.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009) 11
Algunas especies raras o interesantes de Salamanca
Hábitat: fructica en bosques de planifolios de robles o
de encinas, a veces en bosque mixto. En pequeños grupos.
Verano y principios de otoño. Muy rara.
Comestibilidad: buen comestible.
Observaciones: caracteriza a esta especie la coloración
muy clara del sombrero, pie con no retículo, engrosamiento
en la base, y sobre todo, la banda circular rosácea que apa-
rece en la parte media de éste. Este hallazgo, ha sido, hasta
ahora, la única vez que la hemos visto.
Boletus lupinus Fr.
Material estudiado: SALAMANCA. La Orbada. Bajo
encinas, 14-IX-2002, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo
& J.B. del Val, det. A. García Blanco. MA-Fungi 54769 Ex
AVM 1427.
Macroscopía. Sombrero: de 6-16 cm de diámetro, ini-
cialmente hemisférico, después convexo, carnoso. Cutícu-
la: algo aterciopelada, al principio de color rosa vinoso, no
uniformemente coloreada, ya que presenta manchas de color
rojo púrpura con tonos rosa oliva y con la edad rosa vivo o
amarillo rojizo, sobre un fondo amarillo cromo; con la edad
la coloración en general palidece bastante; margen más cla-
ro. Pie: de 6-14 x 2-4 cm, cilíndrico, ensanchado en la base,
carnoso, amarillo en lo alto y anaranjado el resto, débilmente
punteado de color rojo pálido. Poros: rojo escarlata o anaran-
jado, con tendencia a teñirse de azul marino al roce. Tubos:
de color amarillo oliváceo. Carne: amarilla, al corte azulea.
Olor: ácido. Sabor: acidulado.
Microscopía. Esporas: fusiformes a amigdaliformes, de
12-16 x 5-6 µm, amarillentas, lisas. Esporada pardo oliva.
Hábitat: fructica en bosques de frondosas, principal-
mente en encinares. De primavera a otoño. Poco frecuente.
Comestibilidad: no comestible.
Observaciones: dada la variabilidad cromática del sombre-
ro, es una especie que resulta de identicación complicada. Se
podría confundir con B. splendidus que posee el pie cubierto de
una malla evidente, o con B. erythropus que tiene el pie puntea-
do, pero el color del sombrero, en general, es diferente.
Agradecimientos
Sirva este modesto trabajo como un homenaje especial
a todos los amigos de “Lazarillo”, como agradecimiento por
todas sus atenciones.
Aprovecho también para dedicárselo a mis nietas Paula y
Enma, que ya tienen su cestita de La Alberca, para cuando su
edad les permita salir conmigo al campo en busca de setas.
Fig. 10. Boletus lupinus Fr.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 5-12 (2009)12
García Blanco, A.
Referencias
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torial Biella Giovanna. Saronno. Italia.
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ZO (2001). Hongos-Setas- en Castilla y León. Edición de los auto-
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zugazae, F.D. Calonge & García Blanco (Ascomycotina), especie
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Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009) 13
S
e presenta un trabajo sobre los hongos estipitados con
himenóforo hidnoide que fructican en el Parque Na-
tural y Reserva de la Biosfera de “Las Batuecas-Sierra
de Francia”. Recogemos los géneros Auriscalpium Gray (Au-
riscalpiaceae Maas G. 1963), Hydnum L. (Hydnaceae Chev.
1826), Phellodon P. Karst. (Bankeraceae Donk 1961), Sar-
codon Quél. ex P. Karst. y Hydnellum P. Karst. (Thelephora-
ceae Chev. 1826). Los estudios preliminares de este grupo
de hongos en la provincia de Salamanca se reducen a algu-
na cita aislada en trabajos más generales (SÁNCHEZ & al.,
1980; CALONGE & al., 2000; VELASCO & al., 2007).
Material y métodos
Durante los años 2002-2007 se han efectuado recolec-
ciones en los ambientes más representativos de la zona de
estudio: castañares de Castanea sativa Mill., robledales de
Quercus pyrenaica Willd. y Quercus robur L., madroñales
de Arbutus unedo L. y pinares de Pinus pinaster Aiton y Pi-
nus sylvestris L. Para la identicación del material se han
utilizado las técnicas clásicas en micología, analizando tanto
caracteres macroscópicos como microscópicos para lo que
se ha contado con un microscopio LEICA DMRD con cá-
mara de vídeo LEICA DC100 y programa de tratamiento y
análisis de imagen LEICA Qwin. Para la identicación de
los diferentes especímenes se ha utilizado principalmente la
bibliografía que se señala a continuación: BAIRD (1986),
BREITENBACH & KRÄNZLIN (1986), HANSEN &
KNUDSEN (1997), HARRISON (1964), HARRISON &
GRUND (1987a,b) y PEGLER & al. (1997). Para más da-
tos sobre la distribución en la Península Ibérica el lector es
referido a ILLANA & BLANCO (2001) y HERNÁNDEZ
CRESPO (2006). La nomenclatura sigue principalmente a
CABI Index Fungorum (2009) y CBS Aphyllophorales data-
base (2009). El material que respalda el listado se encuentra
depositado en el Herbario de la Universidad de Salamanca
(SALA), Herbario de la Sociedad Micológica Salmantina
“Lazarillo” (LAZA) y Herbario del Real Jardín Botánico de
Madrid (MA).
Listado de especies
En el presente estudio se recogen un total de 12 espe-
cies. El listado se encuentra ordenado alfabéticamente y se
indica: localidad, coordenadas UTM, altitud, substrato y/o
hábitat, fecha, leg., det. y número de herbario. Se muestra el
aspecto macroscópico de algunas especies en la Fig. 1. Un
total de 5 especies marcadas con un asterisco (*), represen-
tan novedades para la provincia de Salamanca de acuerdo
con la revisión bibliográca efectuada por HERNÁNDEZ
MELCHOR & VELASCO (2007). Algunas de las mismas
como Hydnellum concrescens (Pers.) Banker o Sarcodon
fuligineoviolaceous (Kalchbr.) Pat., aunque no aparezcan re-
ejadas en publicaciones cientícas, sí han sido previamente
recolectadas y recogidas en las exposiciones de la Sociedad
Micológica “Lazarillo” (DELGADO HERNÁNDEZ, 2007)
así como en VALLE (coord.) (2005). Descartamos la pre-
sencia de Hydnellum caeruleum (Hornem.) P. Karst. citado
por CALONGE & al. (2000), ya que el material de herbario
SALA-Fungi 887 corresponde en realidad a Phellodon niger
(Fr.) P. Karst. Sarcodon fuligineoviolaceous es una especie
incluida en la propuesta de 33 hongos amenazados de Euro-
SOBRE LOS HIDNOS ESTIPITADOS (BASIDIOMYCOTA)
PRESENTES EN EL PARQUE NATURAL DE
“LAS BATUECAS-SIERRA DE FRANCIA”
(SALAMANCA, ESPAÑA)
Sergio Pérez Gorjón
1
y Prudencio García Jiménez
2
Dpto. de Botánica. Universidad de Salamanca. Avda. Licenciado Méndez Nieto s/n. 37007. Salamanca.
1
E-mail: spgorjon@usal.es
2
E-mail: chencho1950@yahoo.es.
re s u m e n : Se citan 12 especies de hidnos estipitados en el espacio natural de “Las Batuecas-Sierra de Fran-
cia”, 5 de las cuales representan novedades para la provincia de Salamanca. Se aporta descripción macro y
microscópica, notas sobre el hábitat y distribución en la Península Ibérica, clave de identicación y fotografía
de algunas especies.
p
a l a b r a s C l a v e : Corología, Península Ibérica, Auriscalpium, Hydnellum, Hydnun, Phellodon, Sarcodon.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009)14
Pérez Gorjón, S. & García Jiménez, P.
pa para el Apéndice I del Convenio de Berna (DAHLBERG
& CRONEBORG, 2006), presenta gran interés corológico
por su rareza y se encuentra principalmente distribuida por la
mitad norte de la Península Ibérica en bosques de coníferas,
sin embargo, nosotros la hemos recolectado en un zona in-
usual como es un bosquete de madroños (PÉREZ GORJÓN
& al., 2007). El resto de especies que contiene el listado se
encuentran ampliamente distribuidas por toda la Península
Ibérica.
Auriscalpium vulgare Gray
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleo de
semicircular a reniforme, de alrededor de 2 cm, más o me-
nos tomentoso a hirsuto, marrón; estípite lateral, de 2-3 mm
de diámetro y longitud variable, densamente tomentoso y de
color marrón negruzco; himenóforo hidnoide con acúleos de
2-3 mm de longitud, de color marrón; contexto blanquecino,
duro, con línea negra que separa la cutícula del resto. Sis-
tema de hifas dimítico; hifas generativas buladas, 2.5-3.5
μm, de pared delgada, hialinas; hifas esqueléticas de pared
engrosada, 3-5 μm, marrones. Gloeocistidios cilíndricos a fu-
siformes, 30-40 x 4-6 μm, con contenido granuloso. Basidios
claviformes, 15-25 x 5-6 μm, tetraspóricos, con fíbula basal.
Basidiósporas elipsoides, 4.5-5.5 x 3.5-4.5 μm, namente
verrugosas, con pared ligeramente engrosada, hialinas, ami-
loides. Hábitat: Fructica en piñas de pino. Distribución:
Ampliamente distribuida sobre todo por la mitad norte de la
Península Ibérica. Observaciones: Fácilmente reconocible
por la forma de la fructicación y el hábitat lignícola sobre
estróbilos de pinos. Según los resultados del estudio molecu-
lar de LARSSON & LARSSON (2003), Auriscalpium esta-
ría estrechamente relacionado con Gloiodon (con basidioma
efuso-reejo a diferencia del estipitado de Auriscalpium)
dentro del linaje de hongos rusuloides.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293,
1020 m, en piñas de Pinus sylvestris, 14.11.2004, leg. & det.
S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2500.
Hydnellum aurantiacum (Batsch) P. Karst.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleos
generalmente conuentes, de dimensiones variables, más
o menos convexos, zonados, de color anaranjado marrón,
margen blanquecino, supercie más o menos aterciopelada;
himenóforo hidnoide, con acúleos de 2-3 mm, de color blan-
quecino (marrón por el depósito de la esporada); estípite de
dimensiones variables, de color marrón anaranjado; contexto
Fig. 1. Auriscalpium vulgare Gray.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009) 15
Sobre hidnos estipitados presentes en el parque natural de “Las Batuecas-Sierra de Francia”. (Salamanca)
coriáceo y suberoso, anaranjado. Sistema de hifas monomí-
tico; hifas con septos simples, de 3-5 μm, hialinas a marrón
claro. Basidios claviformes, 30-40 x 5-8 μm, tetraspóricos,
con simple septo basal. Basidiósporas subglobosas, 5.5-7 x
4.5-6 μm, tuberculadas, marrones, IKI-. Hábitat: En bos-
ques principalmente de coníferas; recolectada en la zona de
estudio en madroñales. Distribución: Ampliamente distri-
buida por la Península Ibérica pero poco frecuente.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : Miranda del Casta-
ñar, 30TTK4786, 620 m, sobre tronco de Arbutus unedo,
06.11.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez,
SALA-Fungi 2501. Villanueva del Conde, 30TTK4687, 650
m, bosquete mezcla de madroño y castaño, 07.11.2006 leg.
& det. S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2502.
*Hydnellum concrescens (Pers.) Banker
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleos
generalmente conuentes, de dimensiones variables, más
o menos convexos, zonados, de color marrón rojizo con el
margen más o menos blanquecino, supercie más o menos
tomentosa; himenóforo hidnoide, con acúleos de 2-3 mm,
de color marrón rojizo; estípite de dimensiones variables, de
color marrón que oscurece al roce; contexto coriáceo y su-
beroso, marrón rojizo. Sistema de hifas monomítico; hifas
con septos simples, de 3-5 μm, hialinas a marrón claro. Basi-
dios claviformes, 30-40 x 6-7 μm, tetraspóricos, con simple
septo basal. Basidiósporas subglobosas, 4.5-6 x 3.5-4.5 μm,
tuberculadas, marrones, IKI-. Hábitat: En bosques princi-
palmente de planifolios; recolectada en la zona de estudio en
madroñales, melojares y castañares. Distribución: Amplia-
mente distribuida por la Península Ibérica pero poco frecuen-
te; nueva cita para la provincia de Salamanca.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293,
1020 m, en robledal de Quercus pyrenaica, 27.10.2002, leg.
& det. S. Pérez Gorjón, J. Sánchez Sánchez, L.A. Parra & P.
García Jiménez, SALA-Fungi 2507. El Cabaco, 29TQE4294,
1000 m, en robledal de Quercus pyrenaica, 29.10.2006,
leg. & det. S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2508. Madroñal,
29TQE4982, 650 m, en humus de madroñal, 26.10.2002,
leg. & det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez, SALA-
Fungi 2506. Madroñal, 29TQE4982, 650 m, en madroñal,
11.11.2006, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2510.
Madroñal, en zona de aliseda y madroño, leg. J.M. Velas-
co, LAZA 1611. Miranda del Castañar, 30TTK4785, 560
m, sobre suelo de castañar, 10.10.2002, leg. & det. S. Pérez
Gorjón & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2503. Miranda
del Castañar, 30TTK4884, 560 m, sobre suelo de madroñal,
17.10.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez,
SALA-Fungi 2504. Miranda del Castañar, 30TTK4786, 620
m, sobre suelo de madroñal, 06.11.2002, leg. & det. S. Pérez
Gorjón & P. García Jiménez, MA 59099, SALA-Fungi 1777.
Mogarraz, 29TQE5186, 600 m, en castañar, 24.10.2002, leg.
& det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez, SALA-Fungi
2505. Villanueva del Conde, 30TTK4687, 650 m, en madro-
ñal, 07.11.2006, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi
2509.
*Hydnellum ferrugineum (Fr.) P. Karst.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleos ge-
neralmente conuentes, de dimensiones variables, al prin-
cipio informes, más o menos globosos, después convexos,
zonados, de color blanquecino al principio a marrón rojizo
en la madurez, con el margen más o menos concoloro o más
claro, supercie más o menos tomentosa, que exhuda gotas
de un líquido rojizo al inicio del desarrollo; himenóforo hid-
noide, con acúleos de 2-4 mm, de color marrón rojizo; estí-
pite de dimensiones variables, de color marrón que oscurece
al roce; contexto coriáceo y suberoso, marrón rojizo. Sistema
de hifas monomítico; hifas con septos simples, de 3-5 μm,
hialinas a marrón claro; con hifas oleíferas de dimensiones
variables. Basidios claviformes, 20-30 x 5-6 μm, tetraspó-
ricos, con simple septo basal. Basidiósporas subglobosas,
4.5-6 x 3.5-4.5 μm, tuberculadas, marrones, IKI-. Hábitat:
En bosques principalmente de coníferas. Distribución: Am-
pliamente distribuido por la Península Ibérica; nueva cita
para la provincia de Salamanca.
Fig. 2. Hydnellum aurantiacum (Batsch) P. Karst. Fig. 3. Hydnellum concrescens (Pers.) Banker.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009)16
Pérez Gorjón, S. & García Jiménez, P.
Material estudiado: Sa l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK4888,
650 m, pinar de Pinus pinaster, 22.11.2006, leg. & det. S.
Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2512. Herguijuela de la Sierra,
29TQE4981, 650 m, pinar de Pinus pinaster, 18.11.2007, leg.
S. Pérez Gorjón & B.M. Rojas Andrés, det. S. Pérez Gorjón,
SALA-Fungi 2513. Miranda del Castañar, 30TTK4886, 680
m, pinar de Pinus pinaster, 22.11.2006, leg. & det. S. Pérez
Gorjón, SALA-Fungi 2511.
Hydnum repandum L.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleo
convexo, de 3-10 cm de diámetro, supercie piléica más o
menos velutina a tomentosa, de color amarillento ocráceo;
himenóforo hidnoide, con acúleos de 2-3 mm, más o menos
blanquecinos o crema, acúleos decurrentes por el pie; estípi-
te cilíndrico, de dimensiones variables, generalmente blan-
quecino a crema; contexto frágil y quebradizo, más o menos
blanquecino a amarillento. Sistema de hifas monomítico;
hifas generativas buladas, de dimensiones variables, ge-
neralmente de 2-5 μm, de pared delgada, hialinas. Basidios
más o menos claviformes, 30-50 x 6-8 μm, tetraspóricos, con
fíbula basal. Basidiósporas elipsoides a subglobosas, 6-8 x
5-6 μm, lisas, apiculadas, de pared delgada, hialinas, gutula-
das, IKI-. Hábitat: En bosques de planifolios y de coníferas.
Distribución: Común y ampliamente distribuida por toda la
Península Ibérica.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293,
1020 m, en robledal de Quercus pyrenaica, 27.10.2002,
leg. & det. S. Pérez Gorjón, J. Sánchez Sánchez, L.A. Pa-
rra & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2515. El Cabaco, pi-
nar, 28.10.2006, leg. J.M. Velasco, LAZA 690. Madroñal,
29TQE4982, 650 m, en madroñal, 11.11.2006, leg. & det. S.
Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2516. Mogarraz, 29TQE5186,
600 m, en castañar, 24.10.2002, leg. & det. S. Pérez Gor-
jón & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2514. Monforte,
29TQE4885, 920 m, en robledal de Quercus pyrenaica,
25.10.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez,
SALA-Fungi 2543. San Martín del Castañar, 29TQE5090,
840 m, en robledal de Quercus robur, 21.11.2002, leg. &
det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez, MA 59100, SA-
LA-Fungi 1778. Villanueva del Conde, 30TTK4687, 650 m,
madroñal-castañar, 07.11.2006, leg. & det. S. Pérez Gorjón,
SALA-Fungi 2542.
Hydnum rufescens Pers.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleo con-
vexo, de 3-5 cm de diámetro, supercie piléica más o menos
velutina a tomentosa, de color anaranjado rojizo; himenóforo
hidnoide, con acúleos de 2-3 mm, más o menos blanquecinos
o crema, acúleos escotados que no llegan al pie; estípite cilín-
drico, de dimensiones variables, generalmente blanquecino a
crema; contexto frágil y quebradizo, más o menos blanque-
cino a amarillento. Sistema de hifas monomítico; hifas gene-
rativas buladas, de dimensiones variables, generalmente de
Fig. 4. Hydnellum ferrugineum (Fr.) P. Karst.
Fig. 5. Hydnum rufescens Pers.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009) 17
Sobre hidnos estipitados presentes en el parque natural de “Las Batuecas-Sierra de Francia”. (Salamanca)
2-4 μm, de pared delgada, hialinas. Basidios más o menos
claviformes, 30-50 x 6-8 μm, tetraspóricos, con fíbula basal.
Basidiósporas elipsoides a subglobosas, 6-8 x 5-7 μm, lisas,
apiculadas, de pared delgada, hialinas, gutuladas, IKI-. Hábi-
tat: En bosques de planifolios y de coníferas. Distribución:
Común y ampliamente distribuida por toda la Península Ibéri-
ca. Observaciones: Las principales características macroscó-
picas que lo diferencian de H. repandum son el color anaran-
jado de la supercie piléica y los acúleos escotados.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : Cepeda, 620 m,
29TQE5083, en robledal de Quercus pyrenaica, 04.12.2002,
leg. & det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez, MA
59101, SALA-Fungi 1779. Miranda del Castañar, 620 m,
30TTK4786, en madroñal, 06.11.2002, leg. & det. S. Pérez
Gorjón & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2517.
*Phellodon melaleucus (Sw. ex Fr.) P. Karst.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleos
generalmente conuentes, de dimensiones variables, gene-
ralmente 3-6 cm de diámetro, más o menos convexos, zo-
nados, de color crema marrón con el margen blanquecino,
supercie más o menos tomentosa; himenóforo hidnoide,
con acúleos de 2-3 mm, de color marrón grisáceo; estípite de
dimensiones variables, a veces casi inexistente, con estruc-
tura simple, de color marrón; contexto coriáceo y suberoso,
marrón claro. Sistema de hifas monomítico; hifas con septos
simples, de 2-4 μm, hialinas. Basidios claviformes, 25-30 x
4-5 μm, tetraspóricos, con simple septo basal. Basidiósporas
subglobosas, 3.5-4.5 x 3-4 μm, equinuladas, hialinas, IKI-.
Hábitat: En bosques principalmente de coníferas. Distribu-
ción: Ampliamente distribuida por la Península Ibérica pero
poco frecuente; nueva cita para la provincia de Salamanca.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : Madroñal, 29TQE4982,
650 m, en humus de madroñal, 04.11.2002, leg. S. Pérez
Gorjón, J. Sánchez Sánchez & P. García Jiménez, det. S.
Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2518; 11.11.2006, leg. & det.
S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2520. Villanueva del Con-
de, 30TTK4687, 650 m, bosquete de madroños y castaños,
07.11.2006, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2519.
Phellodon niger (Fr.) P. Karst.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleos ge-
neralmente conuentes, de dimensiones variables, general-
mente 3-8 cm de diámetro, más o menos convexos, zonados,
de color azulado negruzco con el margen blanquecino azula-
do, supercie más o menos tomentosa; himenóforo hidnoi-
de, con acúleos de 2-3 mm, de color blanquecino; estípite
de dimensiones variables, con una estructura doble (parte
central dura y parte externa esponjosa), de color negruzco;
contexto coriáceo y suberoso, marrón negruzco. Sistema de
hifas monomítico; hifas con septos simples, de 2-5 μm, hia-
linas. Basidios claviformes, 25-30 x 4-6 μm, tetraspóricos,
con simple septo basal. Basidiósporas subglobosas, 3.5-4.5
x 3-3.5 μm, equinuladas, hialinas, IKI-. Hábitat: En bosques
tanto de coníferas como de planifolios. Distribución: Am-
pliamente distribuida por la Península Ibérica.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293,
1020 m, 27.10.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón, J. Sánchez
Sánchez, L.A. Parra & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2521.
Miranda del Castañar, 30TTK4786, 620 m, en madroñal,
06.11.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez,
SALA-Fungi 2522; 10.12.2006, leg. & det. S. Pérez Gorjón,
SALA-Fungi 2524. Miranda del Castañar, 30TTK4886, 680
m, pinar de Pinus pinaster, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SA-
LA-Fungi 2523. Villanueva del Conde, 30TTK4687, 650 m,
madroñal-castañar, 07.11.2006, leg. & det. S. Pérez Gorjón,
SALA-Fungi 2544.
*Sarcodon fuligineoviolaceus (Kalchbr.) Pat.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleo de
10-12 cm, plano-convexo, supercie pileica más o menos
lisa, de color violáceo-negruzco a rojizo-vináceo; himenó-
Fig. 6. Phellodon niger (Fr.) P. Karst.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009)18
Pérez Gorjón, S. & García Jiménez, P.
foro hidnoide formado por acúleos de hasta 1-2 cm de lon-
gitud, decurrentes por el pie, más o menos violáceos; pie de
8-10 x 1.5-2 cm, concoloro; carne marrón que al corte ad-
quiere un color violáceo-negruzco intenso, con tonos más
claros rosado-rojizos en el pie, picante. Sistema de hifas
monomítico; hifas con septos simples, muy variables en ta-
maño y frecuentemente ampuliformes, generalmente 4-6(10)
μm. Basidios claviformes, 25-30 x 6-8 μm, tetraspóricos, sin
fíbula basal. Basidiósporas irregulares, 5-6(6.5) x 4-5 μm,
tuberculadas, marrones, IKI-. Hábitat: Citado en bosques
de coníferas, en la zona de estudio se ha recolectado en un
bosquete de madroños. Distribución: Escaso y citado en al-
gunas localidades del norte de la Península Ibérica; nueva
cita para la provincia de Salamanca.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar,
30TTK4786, 620 m, en madroñal, 06.11.2002, leg. & det. S.
Pérez Gorjón & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2525.
Sarcodon imbricatus (L.) P. Karst.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleo de
10-30 cm de diámetro, plano-convexo, supercie pileica
escamosa con escamas escuarrosas dispuestas concéntrica-
mente, de color marrón a negruzco; himenóforo hidnoide
formado por acúleos de 1-2 cm de longitud, decurrentes por
el pie, de color crema marrón; pie cilíndrico, variable en tor-
no a 5-8 x 1.5-2 cm, concoloro; carne blanquecina inmutable,
ligeramente amarga. Sistema de hifas monomítico; hifas con
fíbulas, muy variables en tamaño y frecuentemente ampuli-
formes, generalmente 4-5(10) μm. Basidios claviformes, 30-
40 x 6-8 μm, tetraspóricos, con fíbula basal. Basidiósporas
irregulares, 6-8 x 5-6 μm, tuberculadas, marrones, IKI-. Há-
bitat: En bosques de coníferas. Distribución: Ampliamente
distribuida por toda la Península Ibérica.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294,
1020 m, en pinar de Pinus sylvestris, 10.10.2002, leg. & det.
S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez, MA 59109, SALA-
Fungi 1802. El Cabaco, pinar, 06.11.2005, leg. J.M. Velasco,
LAZA 694. Herguijuela de la Sierra, 29TQE4981, 650 m,
en pinar de Pinus pinaster, 18.11.2007, leg. & det. S. Pérez
Gorjón & B.M. Rojas Andrés, SALA-Fungi 2530. Miranda
del Castañar, 30TTK4785, 560 m, en castañar con algún pino
aislado, 10.10.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón & P. García
Jiménez, SALA-Fungi 2526. Nava de Francia, 29TQE4289,
1040 m, en pinar de Pinus pinaster, 25.10.2002, leg. & det.
S. Pérez Gorjón & D. Rodríguez de la Cruz, SALA-Fungi
2527. Nava de Francia, 29TQE4389, 1040 m, 15.11.2004,
leg. & det. S. Pérez Gorjón & J. Sánchez Sánchez, SALA-
Fungi 2528; 30.10.2005, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SALA-
Fungi 2529.
Sarcodon leucopus (Pers.) Maas Geest. & Nannf.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleo de
10-15 cm de diámetro, plano-convexo, supercie pileica
escamosa más o menos lisa de color marrón claro a violá-
ceo; himenóforo hidnoide formado por acúleos de 1-2 cm
de longitud, decurrentes por el pie, de color crema marrón
a púrpura; pie cilíndrico, variable en torno a 4-8 x 2-3 cm,
concoloro; carne blanquecina que vira al gris violáceo sobre
todo en la base del pie. Sistema de hifas monomítico; hifas
con fíbulas, muy variables en tamaño y frecuentemente am-
puliformes, generalmente 4-5(15) μm. Basidios claviformes,
40-60 x 8-10 μm, tetraspóricos, con fíbula basal. Basidióspo-
ras irregulares, 7-9 x 5-6 μm, tuberculadas, marrones, IKI-.
Hábitat: En bosques de coníferas. Distribución: Amplia-
mente distribuida por toda la Península Ibérica.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar,
30TTK4786, 620 m, en madroñal, 06.11.2002, leg. & det.
S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2532;
Fig. 7. Sarcodon fuligineoviolaceus (Kalchbr.) Pat.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009) 19
Sobre hidnos estipitados presentes en el parque natural de “Las Batuecas-Sierra de Francia”. (Salamanca)
01.12.2007, leg. S. Pérez Gorjón & B.M. Rojas Andrés, det.
S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2538. Mogarraz, 29TQE4887,
880 m, en castañar, 24.10.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón
& P. García Jiménez, SALA-Fungi 2531. Nava de Francia,
28TQE4188, 1050 m, bajo Quercus pyrenaica con Pinus sp.,
06.11.2004, leg. & det. J.M. Delgado, LAZA 946. Villanue-
va del Conde, 30TTK4687, 650 m, zona de madroños y cas-
taños, 07.11.2006, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi
2533.
*Sarcodon scabrosus (Fr.) P. Karst.
Descripción: Basidioma pileado y estipitado; píleo de
8-15 cm de diámetro, plano-convexo, supercie pileica esca-
mosa con escamas dispuestas concéntricamente, de color ma-
rrón a negruzco, margen blanquecino; himenóforo hidnoide
formado por acúleos de 1-2 cm de longitud, decurrentes por
el pie, de color blanquecino a crema marrón; pie cilíndrico,
variable en torno a 5-8 x 1.5-2 cm, concoloro; carne blanque-
cina a rosada que se tiñe de azul verdoso en la base del pie.
Sistema de hifas monomítico; hifas sin fíbulas, muy variables
Fig. 9. Sarcodom scabrosus (Fr.) P. Karst
Clave macroscópica de los géneros y especies tratadas
01. Lignícolas, sobre piñas de Pinus ..................................................................................... Auriscalpium vulgare
01. Terrícolas ................................................................................................................................................... 2
02. Esporas hialinas, esporada blanquecina o inapreciable ..................................................................................... 3
02. Esporas marrones, esporada marrón a ferruginosa .......................................................................................... 6
03. Fructicaciones carnosas, quebradizas, aisladas ....................................................................... (gen. Hydnum) 4
03. Fructicaciones coriáceas, brosas, a menudo conuentes ...................................................... (gen. Phellodon) 5
04. Acúleos decurrentes, supercie pileica generalmente amarillenta .......................................... Hydnum repandum
04. Acúleos escotados, supercie pileica generalmente anaranjada .............................................. Hydnum rufescens
05. Supercie pileica generalmente de color crema marrón, pie con estructura simple ............... Phellodon melaleucus
05. Supercie pileica de coloración azul violácea a negruzca, pie con estructura doble
(parte central brosa y parte externa esponjosa) ...................................................................Phellodon niger
06. Fructicaciones generalmente de pequeño tamaño, brosas ................................................... (gen. Hydnellum) 7
06. Fructicaciones generalmente de gran tamaño, carnosas .........................................................(gen. Sarcodon) 9
07. Fructicaciones de color anaranjado vivo ....................................................................Hydnellum aurantiacum
07. Fructicaciones sin tonalidades anaranjadas ................................................................................................... 8
08. Supercie pileica marrón rojiza que al inicio del desarrollo exuda pequeñas gotas rojizas .. Hydnellum ferrugineum
08. Supercie pileica de color marrón ocráceo sin exudaciones .............................................Hydnellum concrescens
09. Sombrero escamoso, con tonalidades marrones ............................................................................................ 10
09. Sombrero más o menos liso, con tonalidades violáceas .................................................................................. 11
10. Carne blanquecina, inmutable ........................................................................................ Sarcodon imbricatus
10. Carne blanquecina a rosada que se tiñe de azul verdoso en la base del pie ............................ Sarcodon scabrosus
11. Carne que al corte adquiere un color violáceo intenso, más o menos rojizo en el pie ...Sarcodon fuligineoviolaceus
11. Carne que al corte vira sólo ligeramente al gris violáceo ........................................................Sarcodon leucopus
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 13-20 (2009)20
Pérez Gorjón, S. & García Jiménez, P.
en tamaño y frecuentemente ampuliformes, generalmente
4-5(15) μm. Basidios claviformes, 30-40 x 6-8 μm, tetras-
póricos, sin fíbula basal. Basidiósporas irregulares, 6-8 x 5-6
μm, tuberculadas, marrones, IKI-. Hábitat: En bosques tanto
de coníferas como de planifolios. Distribución: Ampliamen-
te distribuida por toda la Península Ibérica aunque no parece
frecuente; nueva cita para la provincia de Salamanca.
Material estudiado: S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293,
1020 m, en pinar de Pinus sylvestris, 19.11.2006, leg. & det.
S. Pérez Gorjón & B.M. Rojas Andrés, SALA-Fungi 2537.
Herguijuela de la Sierra, 29TQE4882, 620 m, en pinar de Pi-
nus pinaster, 27.11.2002, leg. & det. S. Pérez Gorjón & P.
García Jiménez, SALA-Fungi 2535. Miranda del Castañar,
30TTK4786, 620 m, en madroñal, 06.11.2002, leg. & det.
S. Pérez Gorjón & P. García Jiménez, SALA-Fungi 2534;
01.11.2003, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SALA-Fungi 2536.
Agradecimientos
Los autores desean expresar su agradecimiento a Fran-
cisco Javier Hernández, conservador del Herbario SALA
por sus gestiones en la búsqueda del material de herbario,
a Juan Manuel Velasco por poner a mi disposición las citas
del Herbario LAZA, a Blanca M. Rojas Andrés, Luis Alberto
Parra y al GPCV (CIALE) por la ayuda en algunas de las jor-
nadas de recolección y el apoyo técnico. El primer autor
agradece a la Junta de Castilla y León la concesión, durante
parte del estudio, de una Beca de Formación de Personal
Investigador conanciada por el Fondo Social Europeo así
como a la Universidad de Salamanca por la concesión de
una ayuda de Movilidad del Personal Investigador.
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cas de macromicetos para la provincia de Salamanca (I). Bol. Mi-
col. FAMCAL, 2: 51-87.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 21-22 (2009) 21
L
os hongos son unos seres vivos peculiares que desde
hace mucho tiempo atraen la atención de numerosas
personas, ya sea desde el ámbito cientíco más estric-
to o desde la curiosidad más amplia, por diversos intereses,
fundamentalmente ambientales, económicos y/o gastronómi-
cos, que conuyen en un único interés, conocer qué especie
tenemos entre nuestras manos. Para ello, tradicionalmente
se ha recurrido y se recurre a la información que nos dan los
cuerpos fructíferos de los hongos, ya sea por los caracteres
macroscópicos o por los microscópicos, aunque la última in-
formación que sirve para completar el conocimiento de una
determinada especie nos la suministra su ciclo de vida. Asi-
mismo, la biología molecular nos aportará datos precisos de
cada especie y la relación con otras especies, y la ecología
nos dará una idea más o menos precisa de las relaciones que
establezca dicha especie de hongo con el resto de seres vivos
que comparten su hábitat.
En estos apuntes pretendemos realizar una pequeña dis-
quisición sobre cómo debemos considerar si una especie está
o no presente en un determinado hábitat, empleando para
ello el caso de Amanita lepiotoides Barla.
Una disquisición, se puede tomar en los dos sentidos que
tiene la palabra, examen riguroso o divagación, desde la ri-
gurosidad es difícil llegar a unas conclusiones taxativas. La
divagación es más fácil, de hecho ya la hemos empezado.
¿Qué es una especie durmiente?, ¿cómo saberlo a ciencia
cierta una vez denida? Podríamos decir que
especie durmiente es aquella que fructica
ocasionalmente en intervalos de tiempo to-
talmente aleatorios, según nuestra posición,
aunque posiblemente el micelio y las micorri-
zas permanezcan bajo tierra tanto en los años
en los que fructica como en los que no apa-
rece el cuerpo fructífero.
En el año 1994, hicimos la primera reco-
lección en el término municipal de Sequeros
(en el paraje de Las Suertes), bajo un bosque
mixto de castaño y roble melojo, de unos
ejemplares que eran evidentemente del géne-
ro Amanita por la presencia de placas, volva
y anillo, pero totalmente desconocidos para
nosotros, pues era la primera vez que los en-
contrábamos. Tenían un carácter muy pecu-
liar, la existencia de escamas por toda la fruc-
ticación (Fig. 1), pues como hemos dicho las
amanitas tienen placas que proceden del velo
universal y que nunca son una excoriación de
la cutícula de las diversas partes del cuerpo
fructífero (o seta, término más coloquial). De
Fig. 1. Detalle de Amanita lepiotoides con placas de color más intenso.
CONSIDERACIONES SOBRE ESPECIES RARAS
Y/O DURMIENTES: EL CASO DE AMANITA LEPIOTOIDES
EN LA PROVINCIA DE SALAMANCA.
Prudencio García Jiménez
Dpto. de Botánica. Universidad de Salamanca. Avda. Licenciado Méndez Nieto s/n. 37007. Salamanca.
E-mail: chencho1950@yahoo.es.
re s u m e n : Utilizando el caso de la Amanita lepiotoides Barla, se aporta una pequeña discusión sobre las especies
raras y/o durmientes y cómo considerar si una determinada especie está o no presente en un determinado
hábitat.
p
a l a b r a s C l a v e : Especies durmientes, Amanita lepiotoides, fructicación, rareza de las especies.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 21-22 (2009)22
García Jiménez, P.
hecho, en un primer momento creímos estar ante ejempla-
res de Macrolepiota. No obstante, cuando hacemos alguna
generalización en la Naturaleza corremos el serio riesgo de
equivocarnos, y en este caso pudimos comprobarlo, puesto
que acabábamos de observarlas en una especie del género
Amanita. Con todos estos datos, fue sencillo conrmar que
se trataba de Amanita lepiotoides Barla.
En ese mismo año, también se localizó en el término mu-
nicipal de La Alberca, en un bosque mixto de castaño y roble
melojo. La singularidad de esta especie nos llevó a buscarla
en los años siguientes sin éxito, puesto que BaRla (1888),
la había encontrado en el mismo lugar y en años sucesivos al
año en que publicó la primera referencia de la especie. Esta
búsqueda infructuosa nos hizo pensar que la especie había
desaparecido y que su presencia en el año 1994 habría sido
una casualidad. Sin embargo, en la primavera de 2007, bajo el
mismo talud presidido por los castaños, encontramos ejempla-
res de la misma (Fig. 2). Esto nos llevó a reexionar sobre uno
de los conceptos que se manejan con más asiduidad en estos
últimos años en el mundo de la Micología, la rareza de las
especies. Consideramos que esta especie es rara porque posee
muy pocas citas en Europa (SACCARDO, 1915; NEVILLE &
POUMARAT, 2004, entre otras), y se ha recolectado recien-
temente en la Península Ibérica (ARRILLAGA & MAYOZ,
2005), pero no está evaluada como tal por los diversos comités
regionales, nacionales e internacionales, seguramente por la
falta de información que existe en torno a la misma, y que
podríamos resumir en pocas palabras diciendo que “lo que no
se encuentra, no existe”. Sin embargo, como señalábamos al
principio, puede que tras largas búsquedas en diversos años, lo
que no encontremos sean los cuerpos fructíferos de la especie,
pero el micelio de la misma esté en el mismo lugar en el que
la encontramos, tal y como se pone de maniesto en nuestro
caso, pues han tenido que pasar casi trece años para localizar
de nuevo la fructicación de esta especie bajo el mismo cas-
taño. Por lo tanto, creemos que no sólo es necesario una de-
nición más precisa de lo que se debe considerar como especie
rara, sino también un mejor y mayor conocimiento de esta y
otras especies, tal y como se pone de maniesto al comprobar
que Amanita lepiotoides Barla no está incluida dentro de nin-
guna lista roja de hongos, a pesar de su irregular distribución
espacial y temporal, debido a los escasos trabajos que existen
sobre su biología y corología. En este punto, el aumento de
estudios que versan sobre las micorrizas será de gran utilidad
para incrementar el conocimiento de los hongos que fructi-
can de forma ocasional, así como la nueva herramienta que
ofrece Internet a todos los acionados que trabajan de forma
rigurosa y desinteresada para ampliar la información existen-
te de muchas especies, y que, además, se puede comprobar
de forma rápida en diversos foros, como nuestros amigos de
http://www.micologia.net
Referencias
ARRILLAGA, P. & I. MAYOZ (2005). Amanita lepiotoides
Barla, primera cita para el País Vasco. Munibe, 56: 21-28.
BARLA, J. B. (1888). Les champignons des Alpes-Maritimes.
A. Gilletta. Nice.
NEVILLE, P. & S. POUMARAT (2004). Amanitae (Amanita,
Limacella & Torrendia). Fungi Europaei, 9. Edizioni Candusso.
SACCARDO, P. A. (1915). Flora italica criptógama. Pars.
I: Fungi. Hymeniales (Leucosporae et Rhodosporae). L. Capella,
Rocca S. Casiano.
Fig. 2. Ejemplares recolectados en Las Suertes (Sequeros) el año 2007.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 23
E
n un trabajo anterior (VELASCO et al., 2007) se pre-
sentaron 183 táxones, de los cuales 161 eran prime-
ras citas corológicas para la provincia de Salamanca.
Ahora se presentan 206 nuevas aportaciones corológicas ten-
dentes a aumentar el conocimiento sobre nuestro patrimonio
micológico provincial.
Material y Métodos
Las técnicas para la identicación de especímenes y co-
lecciones han sido las habituales, utilizando principalmente
como colorante el rojo congo amoniacal en preparaciones
microscópicas. Se ha empleado un microscopio óptico Zeiss,
modelo Axiostar, y una lupa binocular BMS de X(20-40),
así como una lupa de campo de X10. Las guías micológicas
y las monografías con claves de determinación usadas en la
identicación de los ejemplares recogidos son las habituales
en este tipo de trabajos.
Las exsiccata de los especímenes estudiados se encuen-
tran depositadas en la micoteca LAZA, propiedad de la SMS
“Lazarillo” de Salamanca. Se han estudiado ejemplares con-
servados desde el año 2000, en el que se creó dicha micoteca
(herbarium fungi), hasta el 31-VIII-2009.
También se han utilizado muestras depositadas en la
micotecas AVM (Asociación Vallisoletana de Micología);
y SALA-Fungi (Universidad de Salamanca), procedentes
de la realización de una tesis doctoral (GORJÓN, 2008),
parte de dicho material ya ha sido publicado (GORJÓN
& HALLENBERG, 2008; GORJÓN & BERNICCHIA,
2009; GORJÓN, HALLENBERG & BERNICCHIA,
2009).
Para otras cuestiones se siguen las pautas ya explicadas
en VELASCO et al., (2007).
Resultados
Se aporta un segundo catálogo de 206 táxones (a nivel
de especie o variedad) de macromicetos salmantinos que son
primeras citas provinciales. Se han dispuesto los táxones si-
guiendo la clasicación taxonómica utilizada en LLAMAS &
TERRÓN (2005), con algunas matizaciones para ajustarla a
las propuestas más actuales a nivel de los grandes grupos. Se
ha querido seguir este esquema de clasicación porque es el
adoptado para organizar la micoteca LAZA; siendo una mo-
dicación del presentado en ANDRÉS et al., (1999) que fue
el inicialmente empleado cuando se creó la citada micoteca.
Dentro de cada orden o subclase, las especies se han or-
denado alfabéticamente según géneros; no se ha querido utili-
zar la categoría taxonómica de familia por encontrarnos en un
momento de continuos cambios taxonómicos a este nivel.
División (Phylum) ZYGOMYCOTA
Clase Zygomycetes
Orden Endogonales
Endogone ammicorona Trappe & Gerd.
Sa l a m a n c a : Miranda del Castañar, asociado a Cistus lada-
nifer, 18-IV-2003, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B.
del Val; det. A. García Blanco.MA-Fungi 55318 Ex AVM 1617.
División (Phylum) ASCOMYCOTA
Clase Ascomycetes (= Hymenoascomycetes)
Subclase Pyrenomycetidae
Cordyceps militaris (L.) Link
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4283, 796 msnm, en
bosque mediterráneo junto a pinar de repoblación, 29-XII-
2008, leg. M. Higelmo, LAZA 2396.
APORTACIONES COROLÓGICAS DE MACROMICETOS PARA
LA PROVINCIA DE SALAMANCA (II): NUEVAS CITAS
Juan Manuel Velasco Santos
C/ Pontevedra, 18-20, 1ºC. 37003. Salamanca
E-mail: juanmvs@telefonica.net
José Ángel Hernández Melchor
C/ Ponferrada 6-8, 2ºD. 37003. Salamanca
E-mail: ijoseangel@gmail.com
re s u m e n : En esta segunda entrega sobre corología micológica de Salamanca se añaden 206 nuevos táxones
que son primeras citas provinciales.
p
a l a b r a s C l a v e : Hongos macromicetos, corología, Salamanca.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)24
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
Daldinia concentrica (Bolton) Ces. & De Not.
S
a l a m a n c a : Cabrerizos, 30TTL8239, 790 msnm, 9-V-
09, bajo Populus nigra y Fraxinus angustifolius, leg. I. Do-
mínguez, det. I. Domínguez, LAZA 2374.
Pionnotes cesatii (Thüm.) Sacc.
S
a l a m a n c a : La Fregeneda, 29TPF74. Sobre ramas
cortadas de zarza, 28-I-2001, leg. A. Corral; det. A. García
Blanco. AVM 1269.
Subclase Pezizomycetidae
Orden Pezizales
Helvella costifera Nannf.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, en
pastizal, 29-IV-2007, leg. A. Martín y E. Andrés, det. J.M.
Velasco, LAZA 1816. La Orbada, 30TTL9255, 850 msnm,
bajo Quercus ilex subsp. ballota, 2-VI-2008, leg. L.A. Fer-
nández, LAZA 2169.
Helvella crispa (Scop.) Fr.
S
a l a m a n c a : Valverdón, 30TTL7046, 750 msnm, bajo
Quercus ilex subsp. ballota, 22-XII-2006, leg. J.M. Velasco,
LAZA 1741.
Helvella elastica Bull.
S
a l a m a n c a : Valverdón, 30TTL7046, 750 msnm, bajo Quer-
cus ilex subsp. ballota, 1-I-2007, leg. F. Bellido, LAZA 1745.
Helvella macropus (Pers.) P. Karst [= Macroscyphus ma-
cropus (Pers.) Gray]
S
a l a m a n c a : Santibáñez de la Sierra, 30TTK5286, 700
msnm, bajo bosque mixto de Castanea sativa y Quercus
pyrenaica, 30-XI-2002, leg. A. Martín Manresa y C. Huido-
bro, det. A. Martín Manresa, LAZA 716.
Helvella queletii Bres.
S
a l a m a n c a : Aldealengua, 30TTL8639, 770 msnm, bajo
Populus nigra, 25-III-2001, leg. A. García García, LAZA
740. Villavieja de Yeltes, 29T QF12, 780 msnm, en pastizal
con Quercus ilex subsp. ballota, 23-IV-2008, leg. L.A. Fer-
nández, LAZA 2115.
Morchella esculenta (L.) Pers. [= Morchella rotunda
(Fr.) Boud.]
S
a l a m a n c a : Ledrada, 30TTK68, 800 msnm, en pastizal
con Fraxinus angustifolius, 9-IV-2004, leg. A. García García,
LAZA 573. Sanchotello, 30TTK6681, 900 msnm, en pasti-
zal con Fraxinus angustifolius y Quercus pyrenaica, leg. A.
García García, LAZA 1831. Salvatierra de Tormes, en orilla
del pantano, 8-IV-2004, leg. A. García García, LAZA 572.
Morchella vulgaris (Pers.) Boud. (= Morchella conica Pers.)
S
a l a m a n c a : Salamanca, entre el IES Francisco Salinas y
el campo de fútbol de Garrido, 30T TL7838, 820 msnm, en
escombrera, 10-IV-2003, leg. A. García García, J.M. Delga-
do y J.M. Velasco, LAZA 762.
Peziza vesiculosa Bull.
S
a l a m a n c a : Rinconada de la Sierra, 29TQE5199, 1.000
msnm, sobre paja, 25-III-2001, leg. G. García Cuesta, det.
J.M. Velasco, LAZA 747.
Scutellinia scutellata (L.) Lambotte
S
a l a m a n c a : Cabrerizos, 30TTL8439, 780 msnm, bajo
Populus nigra, 17-IV-2006, leg. F. Bellido, LAZA 1265.
Fig. 1. Endogone ammicorona Trappe & Gerd. (Foto: Aurelio García)
Fig. 2. Helvella crispa (Scop.) Fr. (Foto: José Angel Hernández)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 25
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
Tarzetta cupularis (L.) Svrček
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1.100
msnm, bajo Castanea sativa, 11-V-2003, leg. H.A. Gallego,
det. J.M. Velasco, LAZA 749.
Orden Helotiales
Arachnopeziza aurelia (Pers.) Fuckel
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, en humus mixto de
encina y eucalipto, 3-V-2003, leg. A. García Blanco, M.
Sanz Carazo & J.B. del Val; det. A. García Blanco. MA-
Fungi 55288 Ex AVM 1649.
Bulgaria inquinans (Pers.) Fr.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1.000 msnm, bajo Quer-
cus pyrenaica, 8-XI-2003, leg. A. García García, LAZA 468.
Orden Tuberales
Picoa juniperi Vittad.
S
a l a m a n c a : Aldealengua, 30TTL8639, 770 msnm, bajo
matorral xerólo, 4-VII-2007, leg. J.M. Delgado, LAZA
1795.
Terfezia arenaria (Moris) Trappe
S
a l a m a n c a : Olmedo de Camaces, 29TQF0129, 750
msnm, bajo bosque aclarado de Quercus pyrenaica con
Quercus ilex subsp. ballota, 30-V-2008, leg. J.M. García
Montero, det. J.M. Velasco, LAZA 2189.
Tuber borchii Vittad. (= Tuber albidum Pico )
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, bajo Cistus ladani-
fer, próximo a pinos, 22-V-2004, leg. A. García Blanco &
M. Sanz Carazo; det. A. García Blanco. MA-Fungi 60017
Ex AVM 1852.
División (Phylum) BASIDIOMYCOTA
Clase Teliomycetes
Orden Ustilaginales
Ustilago maydis (DC.) Corda
Sa l a m a n c a : aldealengua, 30TTL8639, 770 msnm,
infectando cultivo de regadío de maíz (Zea mays), 16-
VIII-2009, leg. I. Dominguez Gómez , LAZA 2460.
Subdivisión Basidiomycotina (= Clase Basidiomycetes)
Clase Heterobasidiomycetes (= Subclase Phragmobasi-
diomycetidae)
Exidia saccharina Fr.
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29TQF0123, 750 msnm, so-
bre rama de Pinus pinaster, 4-XII-2005, leg. J.M. Velasco,
LAZA 1193. El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, sobre
rama de Quercus pyrenaica, 8-XI-2003, J.M. Velasco y A.
García, det. J.M. Velasco, LAZA 474.
Exidia truncata Fr.
S
a l a m a n c a : Santibáñez de la Sierra, 30TTK5286, 700
msnm, sobre madera de Quercus pyrenaica, 1-XII-2002, leg.
Fig. 3. Tuber borchii Vittad. (= Tuber albidum Pico). (Foto: Aurelio García)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)26
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
A. Martín Manresa y C. Huidobro, det. A. Martín Manresa,
LAZA 781. Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100 msnm,
sobre rama de Castanea sativa, leg. J.M. Velasco y J.A. Her-
nández, leg. J.M. Velasco, LAZA 1695.
Clase Homobasidiomycestes (= Subclase Holobasi-
diomycetidae)
Subclase Aphyllophoromycetidae (= O. Aphyllophora-
les s.l.)
Antrodia albida (Fr.) Donk
S
a l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK4987, 650 msnm, en
madera de Eucalyptus camaldulensis, 17-X-2002, S. Pérez-
Gorjón & P. García-Jiménez, SALA-Fungi 1854.
Antrodia vaillantii (DC.) Ryvarden
S
a l a m a n c a : Nava de Francia, El Casarito, 29TQE4389,
1040 msnm, en madera de Pinus pinaster, 30-X-2005, S.
Pérez-Gorjón, SALA-Fungi 1823.
Antrodiella romellii (Donk) Niemelä
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4686, 1060 msnm, en
madera de Quercus pyrenaica, 12-XI-2003, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 1761.
Ceriporia purpurea (Fr.) Donk
S
a l a m a n c a : San Martín del Castañar, 29TQE5090, 850
msnm, en madera de Quercus robur, 14-XI-2004, S. Pérez-
Gorjón, SALA-Fungi 2847.
Ceriporia reticulata (Hoffm.) Domanski
S
a l a m a n c a : Nava de Francia, 29TQE4390, 1040 msnm,
en madera de Quercus pyrenaica, 16-XI-2007, S. Pérez-Gor-
jón, SALA-Fungi 2849.
Ceriporia viridans (Berk. & Broome) Donk
S
a l a m a n c a : San Martín del Castañar, 29TQE4990, 850
msnm, en madera de Quercus robur, 05-XI-2006, S. Pérez-
Gorjón, SALA-Fungi 2852.
Ceriporiopsis consobrina (Bres.) Ryvarden
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, 30TTK4884, 520
msnm, en madera de Quercus ilex, 14-XI-2006, S. Pérez-
Gorjón, SALA-Fungi 2856.
Cinereomyces lenis (P. Karst.) Spirin (= Skeletocutis lenis
(P. Karst.) Niemelä)
S
a l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK4987, 650 msnm, en
madera de Eucalyptus camaldulensis, 19-III-2006, S. Pérez-
Gorjón & B.M. Rojas-Andrés, SALAFungi 1782.
Cinereomyces vulgaris (Fr.) Spirin (= Skeletocutis vulga-
ris (Fr.) Niemelä & Y.C. Dai)
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293, 1020 msnm, en
madera de Pinus sylvestris, 08-X-2006, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 3781.
Clavaria acuta Sowerby
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293, 1020 msnm, en
hojas en descomposición de Quercus pyrenaica, 19-XI-2006,
S. Pérez-Gorjón & B.M. Rojas-Andrés, SALA-Fungi 2862.
Clavulina cinerea (Bull.) J. Schröt.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293, 1020 msnm, en
madera de Pinus sylvestris, 19-XI-2006, S. Pérez-Gorjón
& B.M. Rojas-Andrés, SALA-Fungi 2875. El Cabaco, 29T
Fig. 4. Ustilago maydis (DC:) Corda. (Foto: Isidro Domínguez)
Fig. 5. Clavulinopsis laeticolor (Berk. & M.A. Curtis) R.H. Petersen.
(Foto: José Angel Hernández)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 27
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
QE4294, 1000 msnm, bajo Quercus pyrenaica, 8-XII-2006,
leg. L.A. Fernández, det. J.M. Velasco, LAZA 1735. La Or-
bada, 30TTL9255, bajo Quercus ilex subsp. ballota, msnm,
23-III-2006, leg. F. Bellido, LAZA 1252.
Clavulina coralloides (L.) J. Schröt.[= Clavulina cristata
(Holmsk.) J. Schröt.]
S
a l a m a n c a : Madroñal, 29TQE4982, 650 msnm, en
bosque de Arbutus unedo, 26-X-2002, S. Pérez-Gorjón, P.
García-Jiménez & J. Sánchez-Sánchez, SALA-Fungi 2877.
Cereceda de la Sierra, 29TQE4794, 1000 msnm, bajo Pinus
pinaster, 26-X-2002, leg. G. García Cuesta, LAZA 05. Ba-
ñobárez, 29TQF0123, 750 msnm, bajo Pinus pinaster, 1-XI-
2002, leg. J.M. Velasco, LAZA 793.
Clavulinopsis laeticolor (Berk. & M.A. Curtis) R.H. Pe-
tersen
S
a l a m a n c a : San Martín del Castañar, 29TQE5090, 840
msnm, en bosque de Quercus robur, 21-XI-2002, S. Pérez-
Gorjón & F. Acera-Hernández, SALA-Fungi 2890.
Craterellus sinuosus (Fr.) Fr.
S
a l a m a n c a : Madroñal, 29TQE4982, 650 msnm, en bos-
que de Arbutus unedo, 11-XI-2006, S. Pérez-Gorjón, SALA-
Fungi 2924.
Daedalea quercina (L.) Pers.
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, 30TTK4886, 600
msnm, en tocón de Eucalyptus camaldulensis, 07-XII-2002,
P. García-Jiménez, SALA-Fungi 2974. Cepeda, 29TQE5182,
650 msnm, bajo Quercus pyrenaica, 6-XI-2004, leg. SMSL,
det. S. Pérez Gorjón, LAZA 934.
Ganoderma resinaceum Boud.
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4686, 1060 msnm,
en base de Quercus pyrenaica, 25-X-2003, S. Pérez-Gor-
jón & P. García-Jiménez, SALA-Fungi 3003. Cabrerizos,
30TTL8439, msnm, bajo Populus spp., 19-IX-2006, leg.
L.A. Fernández, G. Tardáguila & J.M. Velasco, det. J.M. Ve-
lasco, LAZA 1322.
Gloeoporus dichrous (Fr.) Bres.
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5083, 620 msnm, en ma-
dera de Quercus pyrenaica, 26-X-2002, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 3016.
Grifola frondosa (Dicks.) Gray
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, bajo
bosque mixto de Castanea sativa y Quercus pyrenaica, 10-
XI-2007, leg. R. Macein, det. J.M. Velasco, LAZA 2025.
Hericium cirrhatum (Pers.) Nikol.(= Creolophus cirr-
hatus
(Pers.) P. Karst.)
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4382, 600 msnm, en
Quercus suber, 15-XI-2003, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi
3028. Aldealengua, 30TTL8639, 770 msnm, sobre Populus
nigra, 7-XII-2006, leg. J.M. Delgado, LAZA 1733.
Hexagonia nitida Durieu & Mont.
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4183, 620 msnm, sobre
madera de Quercus suber, 17-XII-2003, S. Pérez-Gorjón &
P. García-Jiménez, SALA-Fungi 3031.
Hjortstamia crassa (Lév.) Boidin & Gilles
S
a l a m a n c a : Mogarraz, 29TQE4785, 980 msnm, en ma-
dera de Quercus pyrenaica, 18-XI-2007, S. Pérez-Gorjón &
B.M. Rojas-Andrés, SALA-Fungi 3609.
Inonotus cuticularis (Bull.) P. Karst.
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4382, 600 msnm, en tocón de
Quercus suber, 15-XI-2003, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi 1868.
Junghuhnia nitida (Pers.) Ryvarden
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, en
madera de Quercus pyrenaica, 30-IX-2006, S. Pérez-Gorjón
& B.M. Rojas-Andrés, SALA-Fungi 3218.
Fig. 6. Daedalea quercina (L.) Pers. (Foto: Juan Manuel Velasco)
Fig. 7. Grifola frondosa (Dicks.) Gray. (Foto: Juan Manuel Velasco)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)28
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
Laetiporus sulphureus (Bull.) Murrill
S
a l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK5087, 520 msnm, en
tocón de Eucalyptus camaldulensis, 09-XI-2002, S. Pérez-
Gorjón, SALA-Fungi 3240. Mogarraz, 29TQE5087, 700
msnm, sobre tronco vivo de Castanea sativa, 26-VIII-2004,
leg. J.M. Velasco y A. García García, LAZA 1780.
Leptoporus mollis (Pers.) Quél.
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE3593, 1100 msnm, en
tocón de Pinus pinaster, 05-XI-2003, S. Pérez-Gorjón & J.
Sánchez-Sánchez, SALA-Fungi 1824.
Mucronella calva (Alb. & Schwein.) Fr.
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE3993, 1050 msnm, en ma-
dera de Pinus pinaster, 04-X-2006, S. Pérez-Gorjón, SALA-
Fungi 3294.
Oxyporus latemarginatus (Durieu & Mont.) Donk
S
a l a m a n c a : Madroñal, 29TQE4982, 650 msnm, en tocón de
Arbutus unedo, 25-X-2003, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi 1803.
Perenniporia meridionalis C. Decock & Stalpers
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5083, 620 msnm, en Prunus
avium, 09-XI-2005, S. Pérez-Gorjón & J. Sánchez-Sánchez,
SALA-Fungi 1776.
Phaeolus schweinitzii (Fr.) Pat.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1020 msnm, en to-
cón de Pinus pinaster, 27-X-2002, S. Pérez-Gorjón, P. García-
Jiménez & J. Sánchez-Sánchez, SALA-Fungi 1788. Nava de
Francia, El Casarito, 29TQE4290, 1050 msnm, sobre tocón de
Pinus pinaster, 10-XI-2007, leg. J.M. Velasco, LAZA 1984.
Phellinus ferreus (Pers.) Bourdot & Galzin
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4183, 620 msnm, en Quer-
cus ilex, 17-XII-2003, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi 1848.
Phellinus laevigatus (Fr.) Bourdot & Galzin
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE3692, 1150 msnm, en Be-
tula alba, 02-XII-2007, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi 3526.
Phellinus populicola Niemelä
S
a l a m a n c a : Cabrerizos, 30TTL8239, 760 msnm, sobre
tronco de Populus nigra en orilla de río Tormes, 9-V-2009,
leg. I. Domínguez Gómez & J.M. Velasco, det. J.M. Velasco,
LAZA 2381.
Phellinus pseudopunctatus A. David, Dequatre & Fiasson
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4686, 1060 m, en Quer-
cus pyrenaica, 12-XI-2003, S. Pérez-Gorjón & P. García-
Jiménez, SALA-Fungi 3525.
Phellinus punctatus (Fr.) Pilát
S
a l a m a n c a : Villanueva del Conde, 30TTK4687, 650 m,
en Arbutus unedo, 01-XII-2007, S. Pérez-Gorjón & B.M.
Rojas-Andrés, SALA-Fungi 3532.
Postia fragilis (Fr.) Gilb. & Ryvarden (= Oligoporus fra-
gilis (Fr.) Jülich).
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1020 m, en madera
de Pinus pinaster, 27-X-2002, S. Pérez-Gorjón & P. García-
Jiménez, SALA-Fungi 3303.
Postia hibernica (Berk & Broome) Jülich (= Oligoporus
hibernicus (Berk. & Broome) Gilb. & Ryvarden)
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE3290, 1150 msnm, en
madera de Pinus pinaster, 07-XII-2007, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 3302.
Postia leucomallella (Murrill) Jülich (= Oligoporus leuco-
mallellus (Murrill) Gilb. & Ryvarden)
S
a l a m a n c a : Mogarraz, 29TQE5088, 650 msnm, en
madera de Alnus glutinosa, 05-XI-2006, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 3312.
Postia stiptica (Pers.) Jülich (= Oligoporus stipticus (Pers.)
Gilb. & Ryvarden
S
a l a m a n c a : Mogarraz. 29TQE4887, 880 msnm, en ma-
dera de Pinus pinaster, 10-X-2002, S. Pérez-Gorjón & P.
García-Jiménez, SALA-Fungi 1817.
Postia tephroleuca (Fr.) Jülich (= Oligoporus tephroleu-
cus (Fr.) Gilb. & Ryvarden)
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5083, 600 msnm, en made-
ra de Alnus glutinosa, 15-XI-2004, S. Pérez-Gorjón, SALA-
Fungi 3326.
Pycnoporus cinnabarinus (Jacq.) P. Karst.
S
a l a m a n c a : Valdelosa, 30TTL6762, 870 msnm, sobre
rama de Quercus suber, 27-X-2003, leg. C. González Igle-
sias. det. J.M. Velasco, LAZA 2014.
Ramaria comitis Schild
S
a l a m a n c a : Madroñal, 29TQE4982, 650 msnm, en
bosque de Quercus pyrenaica, 26-X-2002, S. Pérez-Gor-
jón, P. García-Jiménez & J. Sánchez-Sánchez, SALA-Fun-
gi 3644.
Ramaria decurrens (Pers.) R.H. Petersen
S
a l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK4888, 660 msnm, en bos-
que de Quercus ilex, 22-XI-2006, S. Pérez-Gorjón, SALA-
Fungi 3645.
Ramaria accida var. crispula (Fr.) Schild
S
a l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK4987, 650 msnm, en
restos de Eucalyptus camaldulensis, 17-X-2002, S. Pérez-
Gorjón & P. García-Jiménez, SALA-Fungi 3651.
Ramaria avescens (Schaeff.) R.H. Petersen
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1020 msnm, en
humus de bosque de Pinus sylvestris, 10-X-2002, S. Pérez-
Gorjón & P. García-Jiménez, SALA-Fungi 3652.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 29
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
Ramaria mediterranea Schild & Franchi
S
a l a m a n c a : Villanueva del Conde, 30TTK4687, 650
msnm, en humus de Arbutus unedo, 07-XI-2006, S. Pérez-
Gorjón, SALA-Fungi 3664.
Ramaria pallida (Schaeff.) Ricken
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293, 1020 msnm, en
bosque de Quercus pyrenaica, 08-X-2006, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 3665.
Ramaria stricta (Pers.) Quél.
S
a l a m a n c a : La Alberca, 29TQE4183, 620 msnm, en res-
tos de planifolios, 17-XII-2003, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi
3666. El Cabaco, 29TQE4294, 1020 msnm, bajo Quercus pyre-
naica, 14-I-07, A. M. Labajos, det. J.M. Velasco, LAZA 1750.
Ramaria subbotrytis (Coker) Corner
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4293, 1020 msnm, en
bosque de Quercus pyrenaica, 08-X-2006, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 3669. Santibañez de la Sierra, 30TTK5286,
700 msnm, bajo Castanea sativa, 23-V-2004, leg. C. Huido-
bro, det, P. García Jiménez, LAZA 593.
Schizopora avipora (Berk. & M.A. Curtis ex Cooke)
Ryvarden
S
a l a m a n c a : San Martín del Castañar, 29TQE4990, 840
msnm, en madera de Quercus robur, 19-III-2006, S. Pérez-
Gorjón & B.M. Rojas-Andrés, SALA-Fungi 1769.
Schizopora radula (Pers.) Hallenb.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4191, 1050 msnm, en
madera de Quercus pyrenaica, 04-X-2006, S. Pérez-Gorjón,
SALA-Fungi 3697.
Scutiger pes-caprae (Pers.) Bondartsev & Singer. [=
Albatrellus pes-caprae (Pers.) Pouzar]
S
a l a m a n c a : Mogarraz, 29TQE5186, 600 msnm, en
bosque de Castanea sativa, 24-X-2002, S. Pérez-Gorjón &
P. García-Jiménez, SALA-Fungi 2548.
Sistotrema conuens Pers.
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, 30TTK4886, 650
msnm, entre acículas en bosque de Pinus pinaster, 22-XI-
2006, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi 3731.
Fig. 8. Laetiporus sulphureus (Bull.) Quél. (Foto: Juan Manuel Velasco)
Fig. 9. Sparassis crispa (Wulfen) Fr. (Foto: Juan Manuel Velasco)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)30
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
Skeletocutis amorpha (Fr.) Kotl. & Pouzar
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, 30TTK4886, 650
msnm, en madera de Pinus pinaster, 24-XI-2007, S. Pérez-
Gorjón, SALA-Fungi 3741.
Skeletocutis kuehneri A. David
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, en
madera de Quercus pyrenaica, 30-IX-2006, S. Pérez-Gorjón
& B.M. Rojas-Andrés, SALA-Fungi 3744.
Skeletocutis percandida (Malençon & Bertault) Jean Keller
S
a l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK4986, 650 msnm, en
madera de Eucalyptus camaldulensis, 13-XI-2004, S. Pérez-
Gorjón, SALA-Fungi 1819.
Skeletocutis subincarnata (Peck) Jean Keller
S
a l a m a n c a : Garcibuey, 30TTK4887, 640 msnm, en ma-
dera de Quercus ilex, 12-XII-2003, S. Pérez-Gorjón, SALA-
Fungi 3776.
Sparassis crispa (Wulfen) Fr.
S
a l a m a n c a : Casillas de Flores, 29TPE97, 750 msnm,
bajo Pinus pinaster, 4-X-2007, leg. C. Huidobro, LAZA
1953. Navasfrias, 29TPE86, 900 msnm, bajo Pinus sylves-
tris, 15-X-2007, leg. SMSL, det. J.M. Velasco, LAZA 1977.
Thelephora caryophyllea (Schaeff.) Pers.
S
a l a m a n c a : Aldearrubia, 30TTL9343, 840 msnm, bajo
Pinus radiata, 21-XII-2002, leg. F. Bellido, LAZA 696.
Thelephora palmata (Scop.) Fr.
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, 30TTK4786, 620
msnm, en bosque de Arbutus unedo, 06-XI-2002, S. Pérez-
Gorjón & P. García-Jiménez, SALA-Fungi 3870.
Trametes ochracea (Pers.) Gilb. & Ryvarden
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5083, 600 msnm, en madera de
Quercus robur, 23-X-2007, S. Pérez-Gorjón, SALA-Fungi 3914.
Trichaptum abietinum (Dicks.) Ryvarden
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE3593, 1100 msnm, en to-
cón de Pinus pinaster, 05-XI-2003, S. Pérez-Gorjón & J. Sán-
chez-Sánchez, SALA-Fungi 3955. Bañobarez, 30TTL9343,
750 msnm, sobre tronco de Pinus pinaster, 25-XII-2007, leg.
J.M. Velasco, LAZA 2082.
Trichaptum fuscoviolaceum (Ehrenb.) Ryvarden
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE3391, 1150 msnm, en ma-
dera de Pinus pinaster, 08-X-2003, S. Pérez-Gorjón, SALA-
Fungi 3961.
Tyromyces subcaesicus A. David (= Oligoporus sub-
caesius (A. David) Ryvarden & Gilb.)
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5083, 600 m, en madera de
Alnus glutinosa, 13-X-2002, S. Pérez-Gorjón & P.García Ji-
ménez, SALA-Fungi 3324.
Subclase Agaricomycetidae
Orden Tricholomatales
Armillaria gallica Marxm. & Romagn. (= Armillaria bul-
bosa (Barla) Kile & Watling)
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29T QE4294, 1000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 10-XI-2007, leg. SMSL, det. C. Mateos
Velázquez, LAZA 2033.
Calocybe constricta (Fr.) Kühner ex Singer
S
a l a m a n c a : Cantalpino, 30T UL04, 820 msnm, bajo
Pinus pinaster, 1-XII-2002, leg. P. Velázquez, det. J.M. Ve-
lasco, LAZA 115. Mieza, 29T PF9259, 600 msnm, en esco-
bonal de Cystisus multiorus, 8-XII-04, leg. J.M. Velasco y
H.A. Gallego, det. J.M. Velasco, LAZA 992. Bañobárez, 29T
QF0123, 750 msnm, bajo Pinus pinaster, 4-XII-2005, leg.
J.M. Velasco, LAZA 1189.
Calocybe fallax (Sacc.) Redhead & Singer
S
a l a m a n c a : Arabayona de Mógica, 30T TL9845, 850 msnm,
bajo Pinus pinaster, 12-XI-2008, leg. J.M. Delgado, LAZA 2335.
Ampulloclitocybe clavipes (Pers.) Redhead, Lutzo-
ni, Moncalvo & Vilgalys (= Clitocybe clavipes (Pers.) P.
Kumm.)
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29T QE4292, 1000 msnm, bajo
Pinus pinaster, 24-XI-2007, leg. L.A. Fernández, det. A.
García García, LAZA 2069.
Clitocybe maxima (Gaertn. & G. Mey.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Escurial de la Sierra, 30T TL50, 950 msnm,
bajo Quercus ilex ssp. ballota, 30-XI-2008, leg. A. García
García, det. J.M. Velasco, LAZA 2337.
Clitocybe vibecina (Fr.) Quél.
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29T QF0123, 750 msnm, bajo
Pinus pinaster, 25-XII-2007, leg. J.M. Velasco, LAZA 2086.
Rhodocollybia butyracea f. asema (Fr.) Antonín, Halling
& Noordel. (= Collybia butyracea var. asema (Fr.) Cetto)
S
a l a m a n c a : Huerta, 30T TL9237, 780 msnm, bajo Pinus
pinaster, 4-XI-2002, leg. J.M. Velasco, LAZA 113. Santiz,
30T TL5869, 900 msnm, bajo Pinus pinaster, 27-I-2002. leg.
Á. García García. LAZA 152.
Gymnopus fusipes (Bull.) Gray (= Collybia fusipes (Bull.)
Quél.)
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29T QE5182, 650 msnm, bajo
Castanea sativa, 12-VI-2002, leg. J.M. Velasco y J.A. Her-
nández, LAZA 103.
Gymnopus ocior (Pers.) Antonín & Noordel. (= Collybia
luteifolia Gillet)
S
a l a m a n c a : La Orbada, en bosque de encinas, 21-X-
2000, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val;
det. A. García Blanco. MA-Fungi 54782 Ex AVM 1152.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 31
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
Rhodocollybia maculata (Alb. & Schwein.) Singer (= Co-
llybia maculata (Alb. & Schwein.) P. Kumm.)
S
a l a m a n c a : la Alberca, 29T QE4685, 1050 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 6-XI-2000, leg. SMSL, det. J.M. Delga-
do, LAZA 127.
Hygrocybe pratensis (Pers.) Bon (= Cuphophyllus pra-
tensis (Pers.) Bon)
S
a l a m a n c a : Fuenterroble, 30T TK6991, 1000 msnm, en
pinar con jaras (Cistus ladanifer), 15-XII-2002, leg. A. Mar-
tín Manresa, LAZA 149.
Cystoderma carcharias (Pers.) Fayod
S
a l a m a n c a : Fuenterroble, 30TTK6692, 950 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 21-X-2002, leg. J.M. Velasco, S. Elena,
J.A. Hernández, det. J.M. Velasco, LAZA 129.
Cystoderma fallax A.H. Sm. & Singer
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29TQF0123, 750 msnm, bajo
Pinus pinaster, 4-XII-2005, leg. J.M. Velasco, LAZA 1186.
Hohenbuehelia petaloides (Bull.) Schulzer (= Hohenbue-
helia geogenia (DC.) Singer)
S
a l a m a n c a : Aldealengua, 30TTL8639, 770 msnm,
bajo Populus nigra, 23-XI-2003, leg. J.M. Delgado, LAZA
1734.
Hygrocybe coccinea (Schaeff.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 11-XI-2006, leg. SMSL, det. J.M. Velas-
co, LAZA 1642.
Hygrocybe conica var. chloroides (Malençon) Bon
S
a l a m a n c a : Aldeadávila de la Ribera, 29TPF9968, 600
msnm, bajo Quercus pyrenaica, 28-X-2006, leg. SMSL, det.
J.M. Velasco, LAZA 1534.
Hygrocybe psittacina (Schaeff.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 11-XI-2006, leg. H.A. Gallego, J.A. Her-
nández y J.M. Velasco, det. J.A. Hernández, LAZA 1597.
Hygrophorus agathosmus Fr.) Fr.
S
a l a m a n c a El Cabaco, 29TQE4191, 1000 msnm, bajo
Pinus pinaster, 24-XI-2007, leg. L.A. Fernández, det. J.M.
Velasco, LAZA 2067.
Hygrophorus latitabundus Britzelm.
S
a l a m a n c a : Guijuelo, 29TTK7190, 1050 msnm, bajo Pi-
nus pinaster, 10-XII-2008, leg. L.A. Fernández, LAZA 2112.
Hygrophorus russula (Schaeff.) Kauffman
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 10-XI-2007, leg. J.M. Velasco, LAZA 2053.
Lepista ricekii Bon
S
a l a m a n c a : La Orbada. en bosque de encinas, 19-X-
2002, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val;
det. A. García Blanco. AVM 1508.
Lepista sordida (Schumach.) Singer
S
a l a m a n c a : Aldearrubia, 30TTL9343, 800 msnm, bajo
Populus nigra, 29-XI-2002, leg. A. García García, LAZA
226. Villamayor, El Pajarón, 30TTL7344, 800 msnm, bajo
Cupressus arizonica, 29-I-2008, leg. J.M. Ávila, det. J.M.
Velasco, LAZA 2093.
Leucocortinarius bulbiger (Alb. & Schwein.) Singer
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE3792, 1.000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 8-XI-2008, leg. SMSL, det. J.M. Velas-
co, LAZA 2308.
Clitocybe candida Bres. (= Leucopaxillus candidus
(Bres.) Singer)
S
a l a m a n c a : Herguijuela de la Sierra, 29TQE4880, 700
msnm, en pastizal, 28-X-2005, leg. Á. García García, det.
J.M. Velasco, LAZA 1078.
Marasmius collinus (Scop.) Singer
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30T TK5295, 1.100
msnm, en pastizal, 27-IV-1996, leg. A. García Blanco, M.
Sanz Carazo & J.B. del Val; det. A. García Blanco. MA-
Fungi 54185 Ex AVM 411.
Fig. 10. Hygrocybe psittacina (Schaeff.) P. Kumm. (Foto: A. Gallego)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)32
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
Melanoleuca cognata var. cognata (Fr.) Konrad & Maubl.
S
a l a m a n c a : Villaseco de los Gamitos, 29TQF44, 820
msnm, en pastizal, 13-XI-2003, leg. J.M. Velasco, LAZA 462.
Melanoleuca excissa (Fr.) Singer
S
a l a m a n c a : Muñoz, 29TQF32, 750 msnm, en pastizal,
26-XI-2005, leg. L.A. Fernández, det. J.M. Velasco, LAZA
1147. Pereña, 29TQF0771, 700 msnm, en pastizal con Fraxi-
nus angustifolia, 26-III-2006, leg. J.M. Velasco, LAZA 1255.
Mycena alcalina (Fr.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Fuenteliante, 29TQF0529, 780 msnm, so-
bre tocón de Quercus pyrenaica, 2-I-2002, leg. J.M. Velasco,
LAZA 237.
Mycena corticola (Pers.) Gray
S
a l a m a n c a : San Morales, 30TTL9039, 780 msnm, so-
bre corteza de Salix alba, 23-XI-2002, leg. J.M. Velasco,
LAZA 347.
Panus conchatus (Bull.) Fr.
S
a l a m a n c a : Candelario, 30TTK6669, 1.200 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 22-VI-2007, leg. SMSL, det. J.M. Velas-
co, LAZA 1889.
Lentinus strigosus (Schwein.) Fr. (= Panus rudis Fr.)
S
a l a m a n c a : Villoria, 30TUL0140, 850 msnm, sobre
rama de Quercus suber, 29-IV-2003, leg. J.M. Velasco, LAZA
353. Fuenteguinaldo, 29TPE9778, 850 msnm, sobre rama de
Quercus suber, 19-XI-2005, leg. J.I. Gómez, LAZA 1140.
Strobilurus tenacellus (Pers.) Singer
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5182, 650 msnm, sobre
piña enterrada, 18-III-2001, leg. S. Elena, LAZA 296. Lina-
res de Riofrío, 30TTK5295, 1.100 msnm, sobre piña ente-
rrada, 22-IV-2006, leg. L.A. Fernández & J.M. Velasco, det.
J.M. Velasco, LAZA 1280.
Tephrocybe rancida (Fr.) Donk
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4191, 1.050 msnm, bajo
Pinus pinaster, 24-XI-2007, leg. L.A. Fernández, det. J.M.
Velasco, LAZA 2068.
Tricholoma fracticum (Britzelm.) Kreisel
S
a l a m a n c a : Aldearrubia, 30TTL9343, 840 msnm, bajo
Pinus radiata, 8-XII-2005, leg. J.M. Velasco, LAZA 1197.
Tricholoma imbricatum (Fr.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Villasrubias, 29TQE0463, 900 msnm, bajo
Pinus sylvestris, 8-X-2006, leg. L.A. Fernández, LAZA
1378.
Tricholoma portentosum (Fr.) Quél. 1159
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Pinus pinaster, 3-XII-2005, leg. J.M. Velasco &
C. González, LAZA 1159.
Tricholoma stiparophyllum (S. Lundell) P. Karst. (= Tri-
choloma pseudoalbum Bon)
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Castanea sativa, 5-X-2006, leg. A. García Vi-
Fig. 11. Marasmius collinitus (Scop.) Singer. (Foto: Aurelio García)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 33
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
cente, J.A. Hernández & J.M. Velasco, det. J.M. Velasco,
LAZA 1353. Aldeadávila de la Ribera, 29TPF9968, 700
msnm, bajo Quercus pyrenaica, 28-X-2006, leg. vecino de
Aldeadávila, det. J.M. Velasco, LAZA 1523.
Tricholoma ustale (Fr.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5182, 650 msnm, bajo Cas-
tanea sativa con Quercus pyrenaica, 13-X-2001, leg. S. Ele-
na & J.M. Velasco, LAZA 311.
Xerula pudens (Pers.) Singer (= Xerula longipes (P.
Kumm.) Maire)
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Quercus pyrenaica con Castanea sativa, 13-X-
2007, leg. A. Martín Manresa & T. García Plaza, det. A. Mar-
tín Manresa, LAZA 1954.
Xerula radicata (Relhan) Dörfelt (= Oudemansiella radi-
cata (Relhan) Singer)
S
a l a m a n c a : Villasrubias, 29TQE0463, 900 msnm,
bajo Quercus pyrenaica, 8-X-2006, leg. L.A. Fernández, T.
García Plaza & A. García García, det. J.M. Velasco, LAZA
1389.
Orden Agaricales
Agaricus bitorquis Quél.) Sacc.
S
a l a m a n c a : Villamayor de Guareña, 30TTL7442,
790 msnm, entre borde de camino y prado pisoteado,
12-XII-2004, leg. A. Fernádez, det. J.M. Velasco, LAZA
998. Salamanca, 30TTL7838, 820 m, en jardín del par-
que La Alamedilla, 12-XI-2003, leg. J.M. Velasco,
LAZA 465.
Agaricus excellens (F.H. Möller) F.H. Möller
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9156, 850 msnm, bajo
Quercus ilex ssp. ballota, 19-X-2002, leg. A. García Blanco,
M. Sanz Carazo & J.B. del Val; det. A. García Blanco, MA-
Fungi 55279 Ex AVM 1517.
Agaricus moelleri Wasser
S
a l a m a n c a : Carrascal de Barregas, 30TTL7035, 880
msnm, bajo Quercus ilex ssp. ballota, 16-XI-2008, leg. C.
Rodríguez Lorenzo, det. L.A. Parra, LAZA 2314. La Orbada,
30T TL9255,850 m, bajo Quercus ilex ssp. ballota, 9-X-2002,
leg. J.M. Velasco y S. Elena, det. J.M. Velasco, LAZA 68.
Agaricus pampeanus Speg.
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9156, 850 m, en bosque
de encinas, 19-IX-2002, leg. A. García Blanco, M. Sanz Ca-
razo & J.B. del Val; det. L.. A. Parra. AVM 1459.
Agaricus porphyrizon P.D. Orton
S
a l a m a n c a : Fuenterroble, 30TTK6991, 1000 msnm,
bajo Quercus pyrenaica, 21-IX-2002, leg. J.M. Velasco, S.
Elena y J.A. Hernández, det. J.M. Velasco, LAZA 66. Valde-
losa, 870 m, bajo Quercus suber, 4-XI-06, leg. J.M. Velasco,
S. Elena y J.A. Hernández, det. J.M. Velasco, LAZA 1579.
La Orbada, 30T TL9255, 850 m, bajo Quercus ilex subsp.
ballota, 30-V-2008, leg. L.A. Fernández, det. L.A. Parra,
LAZA 2172.
Amanita crocea (Quél.) Singer
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29T QF0221, 750 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 28-X-2001, leg. J.M. Velasco, LAZA 97.
Ibidem, 15-X-06, leg. J.M. Velasco y M. Estévez, det. J.M.
Velasco, LAZA1462. Ledesma, 30T TL5152, 750 msnm, en
encinar adehesado con pastizal, 21-X-2007, leg. M.T. Sán-
chez Hernández, LAZA1989.
Amanita eliae Quél.
S
a l a m a n c a : Nava de Francia-El Casarito, 29T QE4289,
1080 msnm, bajo Quercus pyrenaica, 8-XI-2003, leg. A.
García García & al., det. J.M. Velasco, LAZA 419. El Caba-
co, 29T QE4292, 1000 msnm, bajo bosque mixto de Pinus
pinaster y Quercus pyrenaica, 25-VI-2008, leg. L.A. Fer-
nández, det. C. Gelpi, LAZA 2232.
Amanita excelsa var. excelsa (Fr.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Navasfrías, 29TPE86, 900 msnm, bajo bos-
que mixto de Pinus pinaster y Quercus pyrenaica, 25-XI-
2007, leg. M.J. Hernández Viera, det. J.M. Velasco, LAZA
2060. El Cabaco, 29TQE4292, 1000 msnm, bajo Pinus pi-
naster, 28-XI-2007, leg. L.A. Fernández, det. J.M. Velasco,
LAZA 2074.
Amanita excelsa var. spissa (Fr.) Neville & Poumarat (=
Amanita spissa (Fr.) P. Kumm.)
S
a l a m a n c a : Escurial de la Sierra, 30T TL50, 1000
msnm, bajo Castanea sativa, 9-VI-2007, leg. L.A. Fernán-
dez, LAZA 1836.
Amanita franchetii (Boud.) Fayod
S
a l a m a n c a : Escurial de la Sierra, 30TTL50, 950 msnm,
bajo Quercus pyrenaica, 20-VI-2007, leg. L.A. Fernández,
LAZA 1872.
Fig. 12. Agaricus pampeanus Speg. (Foto: Aurelio García)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)34
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
Amanita ovoidea (Bull.) Link
S
a l a m a n c a : Espino de la Orbada, 30T TL9752, 800
msnm, bajo Quercus ilex ssp. ballota, 28-XI-2005, leg. F.J.
Mateos, det. J.M. Delgado, LAZA 1148.
Coprinopsis macrocephala (Berk.) Redhead, Vilgalys &
Moncalvo (= Coprinus macrocephalus (Berk.) Berk.)
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9156, 850 m, sobre pa-
cas de paja viejas, 27-V-2000, leg. A. García Blanco & M.
Sanz Carazo; det. A. García Blanco. AVM 2014.
Lepiota aspera (Pers.) Quél.
S
a l a m a n c a : Nava de Francia, 29TQE4290, 1050 msnm,
bajo Pinus pinaster, 26-X-2008, leg. M. C. Montero, det.
J.M. Velasco, LAZA 2287.
Lepiota subincarnata J.E. Lange (= Lepiota josserandii
Bon & Boiffard)
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Castanea sativa, 14-XI-2004, leg. Á. García
García, det. J.M. Velasco, LAZA 959. Peñaranda de Braca-
monte, 30TUL12, en pastizal, 5-XI-2005, leg. Á. Martín y E.
Andrés, det. J.M. Velasco, LAZA 1092.
Lepiota ochraceodisca Bon
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9156, 850 m, en bosque
de encinas, 19-X-2002, leg. A. García Blanco, M. Sanz Ca-
razo & J.B. del Val; det. A. García Blanco. AVM 1469.
Lepiota oreadiformis Velen
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9255, 850 msnm, bajo
Quercus ilex subsp. ballota, 2-X-2002, leg. J.M. Velasco y
J.A. Hernández, det. J.M. Velasco, LAZA 225.
Macrolepiota afnis (Velen.) Bon
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica con Castanea sativa, 11-XI-2006, leg.
J.M. Velasco, LAZA 1628.
Macrolepiota fuligineosquarrosa Malençon
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29TQF0225, 750 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 28-X-2001, leg. J.M. Velasco, LAZA
245. Ledesma, 30TTL4951, 750 msnm, bajo Quercus ilex
subsp. ballota, 23-XI-2003, leg. C. Rodríguez Lorenzo, det.
J.M. Velasco, LAZA 478.
Macrolepiota gracilenta (Krombh.) Wasser
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 29-X- 2005, leg. J.M. Velasco, LAZA 1068.
Panaeolus semiovatus var. semiovatus (Sowerby) S.
Lundell & Nannf.
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29TPF9922, 750 msnm, sobre
excremento de vaca en pastizal, 1-XI-2002, leg. J.M. Velas-
co, LAZA 252. Candelario, Hoya Moros, 30TTK66, 1300
msnm, sobre estiércol en prado de montaña, 3-VII-2003, leg.
A. Gallego, S. Elena, J.A. Hernández & J.M. Velasco, det.
J.M. Velasco, LAZA-495.
Orden Cortinariales
Agrocybe pediades (Fr.) Fayod [= Agrocybe semiorbicu-
laris (Bull.) Fayod]
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29T QF0123, 750 msnm, en
pastizal, 1-XI-2005, leg. J.M. Velasco, LAZA 1063. Sala-
manca, 30T TL7838, 820 m, en césped de un jardín, 11-V-
2006, leg. L.A. Fernández, det. J.M. Velasco. LAZA 1289.
Agrocybe praecox (Pers.) Fayod
S
a l a m a n c a : Sancti-Spiritus, 29TQF11, 750 msnm, en
margen de río Gavilanes, 19-IV-2008, leg. L.A. Fernández,
det. Antonio Paris, LAZA 2117.
Cortinarius caperatus (Pers.) Fr. (= Rozites caperatus
(Pers.) P. Karst)
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4191, 1050 msnm, bajo Pi-
nus pinaster, 28-XI-2007, leg. L.A. Fernández, LAZA 2071.
Fig. 13. Coprinopsis macrocefala (Berk.). (Foto: Aurelio García) Fig. 14. Cortinarius olearioides Rob. Henry. (Foto: Aurelio García)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 35
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
Cortinarius cinnamomeoluteus P.D. Orton
S
a l a m a n c a : Castillejo de Martín Viejo, 29TQF9813,
720 msnm, bajo Pinus pinaster, 7-XII-2006, leg. J.M. Velas-
co y M. Estévez, det. J.M. Velasco, LAZA 1722. Los Santos,
30T TK6392, 950 msnm, bajo Castanea sativa, 27-VI-2007,
leg. L.A. Fernández, LAZA 1871.
Cortinarius mucosus (Bull.) Cooke
S
a l a m a n c a : Santiz, 30TTL5867, 900 msnm, bajo Quer-
cus pyrenaica, 27-X-2001, leg. S. Elena y J.M. Velasco,
LAZA 145.
Cortinarius olearioides Rob. Henry
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9156, 850 m, en bosque
de encinas, 9-XI-2001, leg. A. García Blanco & M. Sanz Ca-
razo; det. R. Mahiques. MA-Fungi 59884 Ex AVM 1678.
Cortinarius orellanus Fr.
S
a l a m a n c a : Nava de Francia, 29T QE4188, 1050 msnm,
en bosque mixto de Quercus pyrenaica y Pinus pinaster, 10-
XI-2007, leg. SMSL, det. M. Higuelmo, LAZA 2026.
Cortinarius stillatitius Fr.
S
a l a m a n c a : Villasrubias, 29T PE9659, 900 msnm, bajo
Pinus pinaster, 3-X-2006, leg. L.A. Fernández, det. J.M. Ve-
lasco, LAZA 1384.
Gymnopilus suberis (Maire) Singer
S
a l a m a n c a : El Cubo de Don Sancho, 29T QF2830,
730 msnm, sobre rama de Quercus suber en dehesa jun-
to con Quercus ilex subsp. ballota, 11-XI-2006, leg. L.A.
Fernández, det. J.M. Velasco, LAZA 1418. Valdelosa,
30TTL6762, 870 msnm, sobre rama de Qurecus suber,
4-XI-2006, J.M. Velasco y A. Fernández, det. J.M. Velas-
co, LAZA1589.
Hebeloma mesophaeum (Pers.) Quél.
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29T QF0123, 750 msnm, en
claro herboso de pinar de repoblación de Pinus pinaster,
6-XII-2006, leg. J.M. Velasco, LAZA 1726.
Hebeloma populinum Romagn.
S
a l a m a n c a : Cabrerizos, 30T TL8239 , 760 msnm, en
bajo Populus nigra, 24-X-2008, leg. J.M. Delgado, LAZA
2277.
Hebeloma radicosum (Bull.) Ricken
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29T QE4294, 1000 msnm, bajo
bosque mixto de Castanea sativa y Quercus pyrenaica, 8-XI-
2008, leg. SMSL, det. J.M. Velasco, LAZA 2312.
Inocybe calamistrata (Fr.) Gillet
S
a l a m a n c a : Cepeda, 29TQE5182, 650 msnm, bajo bos-
que mixto de Castanea sativa y Quercus pyrenaica, 10-XI-
2007, leg. SMSL, det. J.M. Velasco, LAZA 2055.
Inocybe dulcamara (Alb. & Schwein.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Aldearrubia, 30TTL8840, 800 msnm, bajo
Populus canadensis de repoblación, 8-IV-2001, leg. J.M. Ve-
lasco, LAZA 207.
Fig. 15. Hebeloma populinum Romagn. (Foto: José Manuel Delgado)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)36
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
Inocybe curvipes P. Karst.
S
a l a m a n c a : La Orbada, en claro en bosque de encinas,
18-IV-2003, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B.
del Val; det. Esteve-Rav. Ex AVM 1613.
Inocybe lacera var. lacera (Fr.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, 30TTK48, 600 m, en
jaral de Cistus ladanifer, 18-IV-2003, leg. A. García Blanco,
M. Sanz Carazo & J.B. del Val; det. Esteve-Rav. AVM 1612.
Inocybe xanthomelas Boursier & Kühner
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, próxima a un madro-
ños, 18-IV-2003, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo &
J.B. del Val; det. Esteve-Rav. Ex AVM 1614.
Psilocybe coprophila (Bull.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Bañobárez, 29TPF9922, 750 msnm, sobre
estiercol de vaca en zona herbosa bajo Pinus pinaster, 4-XII-
2005, leg. J.M. Velasco, LAZA 1184.
Orden Pluteales
Entoloma chalybaeum (Pers.) Noordel.
S
a l a m a n c a : Mieza, 29T PF8956, 400 msnm, en pradera
con escobas (Cytisus multiorus), 23-XI-2003, leg. H.A. Ga-
llego, det. J.M. Velasco, LAZA 616.
Entoloma phaeocyathus Noordel.
S
a l a m a n c a : La Orbada, en prado de encinar, 25-X-2003,
leg. A. García Blanco & M. Sanz Carazo; det. A. García
Blanco. AVM 1748.
Entoloma rhodopolium (Fr.) P. Kumm.
S
a l a m a n c a : Aldeadávila de la Ribera, 29T PF9968, 600
msnm, bajo bosque mixto de Quercus pyrenaica y Pinus
pinaster, 28-X-2006, leg. SMSL, det. J.M. Velasco, LAZA
1532.
Entoloma sericeum (Bull.) Quél.
S
a l a m a n c a : Retortillo, 29T QF21, 670 msnm, en pas-
tizal, 11-IV-2007, leg. L.A.Fernández, det. J.M. Velasco,
LAZA 2317.
Orden Boletales
Boletus reticulatus Schaeff. (= Boletus aestivalis (Paulet) Fr.)
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Castanea sativa, 12-VI-2007, leg. J.M. Velas-
co y J.A. Hernández Melchor, det. J.A. Hernández Melchor,
LAZA 1853.
Boletus calopus Pers.
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100 msnm,
bajo Quercus pyrenaica, 10-V-2004, leg. J.M. Velasco, H.A.
Gallego y J.A. Hernández Melchor, det. J.M. Velasco, LAZA
597. Escurial de la Sierra, 30T TL50, 1000 msnm, bajo Quer-
cus pyrenaica, 20-VI-2007, leg. L.A. Fernández, LAZA 1874.
Boletus fragrans Vittad.
S
a l a m a n c a : Calzada de Don Diego, 30TTL53, 830
msnm, bajo Quercus ilex ssp. ballota, 12-IX-2002, leg. A.
García García, LAZA 12. Retortillo, bajo Quercus ilex ssp.
ballota, 10-X-2007, leg. L.A. Fernández, LAZA 1944. Baño-
bárez, 29T QF0221, 730 msnm, bajo bosque mixto de Quer-
cus ilex ssp. ballota y Quercus pyrenaica, 12-X-2007, leg.
J.M. Velasco y M. Estévez, det. J.M. Velasco, LAZA 1963.
Boletus regius Krombh.
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Quercus pyrenaica, 19-X-2001, leg. J.M. Ve-
lasco, S. Elena y A. García García, det. A. García García,
LAZA 17. El Cabaco, bajo bosque mixto de Castanea sa-
tiva y Quercus pyrenaica, 1-X-2006, leg. A. García García,
LAZA1326. Escurial de la Sierra, 30T TL50, 1000 msnm,
bajo Quercus pyrenaica, 20-VI-2007, leg. L.A. Fernández,
LAZA 1875.
Boletus fechtneri Velen.
S
a l a m a n c a : La Orbada, en bosque de encinas con mu-
chas jaras, 19-X-2002, leg. A. García Blanco, M. Sanz Cara-
zo & J.B. del Val; det. A. García Blanco. AVM 1519.
Boletus moravicus Vacek (=Xerocomus leonis (D.A.
Reid) Bon
S
a l a m a n c a : La Orbada, en bosque de encinas, 19-X-
2002, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val;
det. A. García Blanco. MA-Fungi 55460 Ex AVM 1522. Ibi-
dem, 2-XI-2003, A. García Blanco, M. Sanz Carazo; det. A.
García Blanco. MA-Fungi 60020 Ex AVM 1789.
Gomphidius roseus (Fr.) Fr.
S
a l a m a n c a : Nava de Francia, 29T QE4188, 1050 msnm,
bajo Pinus pinaster con Quercus pyrenaica, 10-XI-2007, leg.
L.A. Conde, det. J.M. Velasco, LAZA 2024.
Fig. 16. Cortinarius caperatus (Pers.) Fr. (Foto: Juan Manuel Velasco)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 37
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
Leccinellum corsicum (Rolland) Bresinsky & Manfr. Bin-
der (= Leccinum corsicum (Rolland) Singer)
S
a l a m a n c a : Retortillo, 29T2319, 780 msnm, bajo Quer-
cus ilex subsp. ballota con Quercus suber y Cistus ladanifer,
11-IV-2007, leg. L.A. Fernández, LAZA 1805.
Leccinellum lepidum (Bouchet ex Essette) Bresinsky &
Manfr. Binder (=
Leccinum lepidum (H. Bouchet ex Es-
sette) Bon & Contu)
S
a l a m a n c a : El Cubo de don Sancho, 29TQF2830, 730
msnm, bajo Quercus ilex subsp. ballota, 11-X-2006, leg.
L.A. Fernández, LAZA 1413. Villagonzalo de Tormes,
30TTL8838, 830 msnm, bajo bosque mixto de Quercus ilex
subsp. ballota y Pinus pinaster, 1-V-2003, leg. J.M. Delgado
y J.M. Velasco, LAZA 29.
Leccinum scabrum (Bull.) Gray
S
a l a m a n c a : Candelario, 30TTL6839, 1200 msnm, bajo Betula
alba 7-XI-2009, leg. L.A. Fernández, LAZA 2483. 30TTK669.
Leccinum versipelle (Fr. & Hök) Snell
S
a l a m a n c a : Salamanca, 30TTL7837, 790 msnm, en el
parque de los Jesuitas, 27-X-2008, leg. J. Sánchez Puerto,
det. J.M. Velasco, LAZA 2288.
Omphalotus olearius (DC.) Singer
S
a l a m a n c a : Aldeadávila de la Ribera, 29TPF9968,
msnm, sobre Olea europaea, 28-XI-2005, leg. B. Martín
Hernández, det. J.M. Velasco, LAZA 1150.
Suillus bovinus (Pers.) Roussel
S
a l a m a n c a : El Maillo, 29TQE39 , 1100 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 11-XI-2006, leg. SMSL, det. J.M. Ve-
lasco, LAZA 1613.
Tapinella atrotomentosa (Batsch) Šutara (= Paxillus
atrotomentosus (Batsch) Fr.)
S
a l a m a n c a : Nava de Francia, El Casarito, 29TQE4290,
1050 msnm, bajo Pinus pinaster con Quercus pyrenaica,
leg. SMSL, det. J.M. Delgado, LAZA 1618.
Orden Russulales
Lactarius atlanticus Bon
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9255, 850 msnm, bajo
Quercus ilex subsp. ballota, 6-II-2006, leg. L.A. Fernan-
dez, det. J.M. Velasco, LAZA 1222. Linares de Riofrío,
30TTK5295, 1100 msnm, bajo Castanea sativa, 10-X-2006,
leg. J.M. Velasco, LAZA 1403.
Lactarius azonites (Bull.) Fr.
S
a l a m a n c a : Escurial de la Sierra, 30TTL50, 950 msnm,
bajo bosque mixto de Castanea sativa y Quercus pyrenai-
ca, 23-VI-2007, leg. L.A. Fernández, det. L. Rubio, LAZA
1879.
Lactarius rugatus Kühner & Romagn.
S
a l a m a n c a : Madroñal, 29TQE4982, 650 msnm, bajo
Castanea sativa, 26-X-2002, leg. J.M. Velasco, LAZA 384.
Fig. 17. Boletus moravicus Vacek (=Xerocomus leonis (D.A. Reid) Bon. (Foto: Aurelio García)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)38
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
Lactarius semisanguiuus R. Heim & Leclair
S
a l a m a n c a : Salamanca, 30TTL7838, 820 msnm, bajo
Pinus pinaster, 15-XI-2003, leg. J. Muñoz, LAZA 458.
Lactarius tesquorum Malençon
S
a l a m a n c a : Santiz, 30TTL56, 900 msnm, bajo Cistus
ladanifer, 18-XI-2001, leg. S. Elena y J.M. Delgado, det.
J.M. Delgado, LAZA 391.
Lactarius uvidus (Fr.) Fr.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1.000 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 8-XI-2003, leg. J. Muñoz, LAZA 470.
Masueco, 29TQF0363, 650 msnm, bajo Quercus faginea
con Cistus ladanifer y Lavandula pedunculata, 28-X-2006,
leg. J.M. Velasco, LAZA 1539.
Lactarius volemus (Fr.) Fr.
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1.100
msnm, bajo bosque mixto de Castanea sativa y Quercus
pyrenaica, 26-VI-2002, leg. H.A. Gallego, LAZA 620. Ol-
medo de Camaces, 29TQF0129, 750 msnm, bajo Quercus
pyrenaica con Quercus ilex subsp. ballota, 3-VI-2007, leg.
J.M. Velasco, LAZA 1840.
Lactarius zonarius (Bull.) Fr.
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1.100
msnm, bajo Castanea sativa, 28-VI-2004, leg. J.M. Velasco,
H.A. Gallego y J.A. Hernández, det. J.M. Velasco, LAZA
611. Fuenterroble, 30TTK6991, 1.000 msnm, bajo Quer-
cus pyrenaica, 21-IX-2002, leg. J.M. Velasco, J.A. Hernán-
dez y S. Elena, det. J.M. Velasco, LAZA 386. Villasrubias,
29TQE0463, 900 msnm, bajo Quercus pyrenaica, 19-IX-
2007, leg. L.A. Fernández, det. J.M. Velasco, LAZA 1905.
Russula aurea Pers.
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Castanea sativa, 12-VI-2007, leg. J.A. Hernán-
dez & J.M. Velasco, det. J.M. Velasco, LAZA 1854.
Russula cyanoxantha (Schaeff.) Fr. (= Russula cutefrac-
ta Cooke), (= Russula cutefracta f. peltereaui Singer)
S
a l a m a n c a : La Orbada, en bosque de encinas, 9-XI-
2001, leg. A. García Blanco, M. Sanz Carazo & J.B. del Val;
det. A. García Blanco. MA-Fungi 54943 Ex AVM 1384. El
Cabaco, 29TQE4294, 1000 msnm, bajo Quercus pyrenaica, 11-
XI-2006, leg. J.M. Velasco, LAZA 1621.
Russula fragilis Fr. var. fragilis
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9255, 850 msnm, bajo Quer-
cus ilex subp. ballota, 16-XII-2004, leg. J.M. Velasco, LAZA 985.
Russula graveolens Romell
S
a l a m a n c a : Bañobárez, El Corcho, 29TQF0225, 750
msnm, bajo Quercus pyrenaica, 12-X-2007, leg. J.M. Velas-
co & M. Estévez, det. J.M. Velasco, LAZA 1958.
Russula heterophylla (Fr.) Fr.
S
a l a m a n c a : Agallas, 29TQE1880, 800 msnm, bajo
Quercus pyrenaica, 8-VII-2006, leg. J.M. Velasco & J.I. Gó-
mez, LAZA 1308.
Russula grata Britzelm. (= Russula laurocerasi Melzer)
S
a l a m a n c a : Los Santos, 30TTK6392, 950 msnm, bajo
Castanea sativa, 25-VI-2007, leg. L.A. Fernández, det. J.M.
Velasco, LAZA 1866.
Russula sororia Fr.
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100
msnm, bajo Castanea sativa, 27-IX-2002, leg. J.M. Velasco
& S.Elena, LAZA 628.
Russula turci Bres.
S
a l a m a n c a : El Cabaco, 29TQE4294, 1.000 msnm, bajo
Pinus pinaster con Quercus pyrenaica, 27-X-2002, leg. J.M.
Velasco, LAZA 636.
Fig. 18. Lactarius uvidus (Fr.) Fr.. (Foto: Juan Manuel Velasco)
Fig. 19. Setchelliogaster tenuipes (Setch.) Pouzar. (Foto: Aurelio García)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009) 39
Aportaciones corológicas de Macromicetos para la provincia de Salamanca (II): Nuevas citas
Subclase Gasteromycetidae
Geastrum coronatum Pers.
S
a l a m a n c a : Valverdón, 30TTL7145, 770 msnm, dehesa
de Quercus ilex subsp. ballota, 8-III-2006, leg. F. Bellido,
LAZA 1236.
Geastrum rufescens Pers.
S
a l a m a n c a : Valverdón, 30TTL7145, 770 msnm, dehe-
sa de Quercus ilex subsp. ballota, 1-I-2007, leg. F. Bellido,
LAZA 1743.
Geopora arenosa (Fuckel) S. Ahmad
S
a l a m a n c a : Cabrerizos, 30TTL8439, 780 msnm, bajo
Populus nigra, 26-I V-2008, leg. F. Bellido, LAZA 2143.
Lycoperdon mammiforme Pers.
S
a l a m a n c a : Linares de Riofrío, La Honfría, 30TTK5295,
1100 msnm, bajo Castanea sativa, 5-X-2006, leg. J.M. Ve-
lasco, A. García Vicente y J.A. Hernández, det. J.M. Velasco,
LAZA 1362.
Lycoperdon utriforme (Bull.) (= Calvatia utriformis
(Bull) Jaap.
S
a l a m a n c a : Peralejos de Abajo, 29TQF2243, en pastizal, 17-
IV-2005, leg. C. González Iglesias, det. J.M. Velasco, LAZA 1007.
Scleroderma cepa Pers.
S
a l a m a n c a : La Orbada, 30TTL9255, 850 msnm, bajo
Quercus ilex subsp. ballota, 20-XI-2006, leg. J.M. Delgado,
LAZA 1652. Linares de Riofrío, 30TTK5295, 1100 msnm,
en borde de camino dentro de rebollar (Quercus pyrenaica),
3-XII-2006, leg. J.M. Velasco & J.A. Hernández, det. J.M.
Velasco, LAZA 1690.
Setchelliogaster tenuipes (Setch.) Pouzar
S
a l a m a n c a : Miranda del Castañar, en plantación de eu-
caliptos, 10-IV-2004, leg. A. García Blanco & M. Sanz Cara-
zo; det. A. García Blanco. MA-Fungi 60004 Ex AVM 1773.
Tulostoma brumale Pers.
S
a l a m a n c a : Cabrerizos, 30TTL8439, 780 msnm, bajo
matorral xerólo, 1-II-2004, leg. O.J. González, det. J.M.
Velasco, LAZA 547.
Discusión
Se aporta al catálogo micológico de Salamanca un total
de 206 táxones de todos los grandes grupos de macromice-
tos, que son todos primeras citas para esta provincia. Que-
remos destacar la agran aportación de hongos aloforales al
catálogo micológico provincial (tabla 1).
Fig. 20. Geopora arenosa (Fuckel) S. Ahmad. (Foto: Fernando Bellido)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40 (2009)40
Velasco Santos, J.M. & Hernández Melchor, J.A.
De las 206 nuevas citas expuestas, 1 corresponde al
phylum Zygomycoya, 18 al phylum Ascomycota y 187 al
phylum Basidiomycota, las cuales se distribuyen en los dife-
rentes grandes grupos según se muestra en la tabla 1.
Con esta aportación queremos enriquecer el conocimien-
to micológico de nuestra provincia y que sirva de punto de
partida para nuevos estudios y colaboraciones con el ánimo
de conocer la biodiversidad fúngica de Salamanca.
Agradecimientos
Deseamos mostrar nuestro más sincero agradecimiento
a Sergio Pérez Gorjón por aportarnos la información de su
tesis doctoral sobre muchas especies del grupo Aloforales,
principalmente, y que todavía no tenía publicadas, cuyas ex-
siccata están depositadas en la micoteca SALA-Fungi. Igual-
mente, queremos dar las gracias a Aurelio García Blanco,
de la Asociación Vallisoletana de Micología, por cedernos
gustosamente sus datos sobre especies que tiene herboriza-
das procedentes de la provincia de Salamanca. Así como a
los compañeros y amigos de Lazarillo que aportan continua-
mente especímenes de setas a la micoteca LAZA proceden-
tes de la provincia.
Referencias
ANDRÉS, J.A. et al., (1999). Guía de hongos de la Península
Ibérica (3ª ed.). Celarayn. León.
GORJÓN, S.P. (2008). Contribución al estudio taxonómico,
corológico y ecológico de los hongos Aphyllophorales s.l. y Gaste-
rales s.l. presentes en los ecosistemas del parque natural y reserva
de la biosfera de “Las Batuecas-Sierra de Francia” (Salamanca,
España). Tesis doctoral. Departamento de Botánica y Centro Hispa-
no-Luso de Investigaciones Agrarias. Universidad de Salamanca.
GORJÓN, S.P. & N. HALLENBERG (2008). New records
of Sistotrema species (Basidiomycota) from the Iberian Peninsula.
Sydowia, 62: 205-212.
GORJÓN, S.P. & A. BERNICCHIA (2009). Antrodia sanda-
liae (Polyporales, Basidiomycota), an interesting polypore collected
in the Iberian Peninsula. Cryptogamie Mycologie, 30(1): 53-56.
GORJÓN, S.P., HALLENBERG, N. & A. BERNIC-
CHIA (2009). A survey of the Corticioid fungi from the Biosphere
Reserve of Las Batuecas-Sierra de Francia (Spain). Mycotaxon,
109: 161-164.
LLAMAS, B. & A. TERRÓN (2005). Guia de campo de los
hongos de la Península ibérica. Celarayn. León.
VELASCO, J.M. et al., (2007). Aportaciones corológicas de
macromicetos para la provincia de Salamanca (I). Bol. Micol. FA-
MCAL, 2: 51-87.
GRUPOS DE MACROMICETOS
NÚMERO DE TÁXONES
PRIMERAS CITAS
Ph. Zygomycota
1
Ph. Ascomycota
18
Ph. Basidiomycota
187
Cl. Teliomycetes
1
Cl. Basidiomycetes
186
SbCl. Phragmobasidiomycetidae
2
SbCl. Aphyllophoromycetidae
63
SbCl. Agaricomycetidae
113
SbCl. Gasteromycetidae
8
TOTALES 206
Tabla. 1 Distribución de las 206 nuevas citas entre los
grandes grupos.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009) 41
E
n un trabajo anterior (HERNÁNDEZ MELCHOR &
VELASCO, 2007) publicado en el nº 3 del Boletín
Micológico Lazarillo se recopiló información de la
presencia de un total de 573 táxones en la provincia de Sala-
manca, constituyendo un primer catálogo o inventario sobre
la riqueza micológica provincial.
Ahora se realiza una primera actualización del catálogo
referido en el que se incluyen 361 nuevos táxones publica-
dos desde 2007 hasta diciembre de 2009 con el ánimo de
mantener al día los conocimientos sobre nuestro patrimonio
micológico, muy poco conocido todavía.
Con ello, el inventario micolçogico de Salamanca
(IMSA) asciende a 934 táxones hasta la fecha.
Material y métodos
Para confeccionar esta actualización hemos acudido a un
total de 15 trabajos cientícos publicados en los dos últimos
años que citan especies encontradas en la provincia (GAR-
CÍA BLANCO, 2006; DANIELS & TELLERÍA, 2007;
GORJÓN, GARCÍA JIMÉNEZ & SÁNCHEZ SÁNCHEZ,
2007; LLISTOSELLA, 2008; PARRA, 2008; GORJÓN &
BERNICCHIA, 2008; GORJÓN & HALLENBERG, 2008;
GORJÓN S.P., BERNICCHIA A. & J. SÁNCHEZ-SÁN-
CHEZ, 2008; GORJÓN S.P. & A. BERNICCHIA 2009a;
GORJÓN S.P. & A. BERNICCHIA 2009b; GORJÓN, HA-
LLENBERG & BERNICCHIA, 2009; GORJÓN & GAR-
CÍA JIMÉNEZ, 2009; GARCÍA BLANCO, 2009; ), y sobre
todo a la primera tesis doctoral que se realiza y se lee en
la provincia de Salamanca (GORJÓN, 2008), dicho trabajo
aporta un total de 183 nuevas citas provinciales, entre estas
7 nuevas para España, algunas de cuyas citas se incluyen en
publicaciones anteriores y el resto se incluyen en la segun-
da entrega de las aportaciones corológicas de macromicetos
de Salamanca (VELASCO & HÉRNANDEZ MELCHOR,
2009), en este mismo boletín.
Todos estos trabajos se recogen en orden cronológico en
la tabla 1; en ella, una clave identica cada artículo. Estas
claves son utilizadas en la tabla 2 para mencionar los traba-
jos. Por ej.: La columna GARCIA/2006 de la Tabla 2, hace
referencia al trabajo citado en la Tabla 1 como: GARCIA
BLANCO, A. (2006). El género Hysterangium en Castilla y
León. Bol. Micol. FAMCAL, 1: 47-54
Con la información obtenida se ha elaborado una base
de datos en formato hoja Excel (tabla 2) en la que se reejan
un total de 361 táxones que han sido debidamente citados en
las publicaciones relacionadas en la tabla 1, indicando los
trabajos en los que cada taxon ha sido citado.
Al igual que en la primera revision, hemos dejado fuera
obras de divulgacion o que no cumplen con los parametros
de divulgacion cientica, aunque se incluyen en las referen-
cias.
LOS MACROMICETOS EN LA PROVINCIA DE SALAMANCA:
PRIMERA ACTUALIZACIÓN DE LA REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA
José Ángel Hernández Melchor
C/ Ponferrada 6-8, 2ºD. 37003. Salamanca
E-mail: ijoseangel@gmail.com
Juan Manuel Velasco Santos
C/ Pontevedra, 18-20, 1ºC. 37003. Salamanca
E-mail: juanmvs@telefonica.net
re s u m e n : Se aporta una revisión de los trabajos micológicos realizados sobre macromicetos en la provincia de
Salamanca desde el 2007 hasta diciembre de 2009, que sirve de base para la actualización de la base de datos
en la que se recogen las citas de las especies de hongos en publicaciones cientícas. Esta revisión bibliográca
recopila información sobre 361 táxones, que unidos a los 573 táxones del trabajo anterior, suman 934 táxones
presentes en la provincia.
p
a l a b r a s C l a v e : Hongos macromicetos, corología, Salamanca.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009)42
Hernández Melchor, J.A. & Velasco Santos, J.M.
PUBLICACIONES CLAVE
GARCIA BLANCO, A. (2006). El género Hysterangium en Castilla y León. Bol. Micol. FAMCAL, 1:
47-54
GARC/06
DANIELS, P.P. & M.T. TELLERÍA (2007). Notas sobre el orden Gomphales (III): táxones de Castilla y
León. Bol. Micol. FAMCAL, 2: 23-37.
DANI/07
GORJON, S.P. ; GARCIA JIMENEZ, P. & J. SÁNCHEZ SÁNCHEZ (2007). Listado preliminar de
Ascomycota presentes en el parque natural de "Las Batuecas-Sierra de Francia" (Salamanca, España).
Stud. Bot., 26: 125-129.
GORJ/07
LLISTOSELLA, J. (2008). Bases Corológicas de Flora Micológica Ibérica. Números 2239-2324
(Lactarius). Cuad. Trab. Flora Micol. Ibér., 22: 11-136.
LLIS/08
PARRA, L.A. (2008). Agaricus L. Allopsalliota Nauta & Bas. Fungi Eurpaei. Parte I. Ed. Candusso.
Alassio (Italia).
PARR/08
GORJÓN, S.P. & A. BERNICCHIA (2008). Algunas especies raras o interesantes de
Alphyllophorales s.l. que fructifican sobre Juniperus oxycedrus en el Parque Natural de Arribes del
Duero (Salamanca, España). Bol. Micol. FAMCAL, 3: 61-71.
GORJ/08a
GORJÓN S.P. & N. HALLENBERG (2008). New records of Sistotrema species (Basidiomycota) from
the Iberian Peninsula. Sydowia, 62: 205-212.
GORJ/08b
GORJÓN S.P.; BERNICCHIA A. & J. SÁNCHEZ-SÁNCHEZ (2008). Amaurodon mustialaensis
(Thelephorales, Basidiomycota), una rara especie en la Península Ibérica. Bol. Soc. Micol. Madrid, 32:
85-90.
GORJ/08c
GORJÓN S.P. & A. BERNICCHIA (2009a). Antrodia sandaliae (Polyporales, Basidiomycota), an
interesting polypore collected in the Iberian Peninsula. Cryptogamie Mycologie, 30(1): 53-56.
GORJ/09a
GORJÓN S.P. & A. BERNICCHIA (2009b). Amyloathelia amylacea (Amylocorticiaceae,
Basdiomycota), novedad para la Península Ibérica. Bol. Micol. FAMCAL, 4: 57-61.
GORJ/09b
GORJÓN S.P.; HALLENBERG N. & A. BERNICCHIA (2009). A survey of the Corticioid fungi from
the Biosphere Reserve of Las Batuecas-Sierra de Francia (Spain). Mycotaxon, 109: 161-164.
GORJ/09c
GORJÓN, S.P. & P. GARCÍA JIMÉNEZ (2009). Sobre los hidnos estipitados (Basidiomycota)
presentes en el parque natural de "Las Batuecas-Sierra de Francia" (Salamanca, España). Bol. Micol.
Lazarillo, 4: 13-20
GORJ/09d
VELASCO, J.M. & J.A. HERNÁNDEZ MELCHOR (2009). Aportaciones corológicas de
macromicetos para la provincia de Salamanca (II): nuevas citas. Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40
VELA/09
GARCÍA BLANCO, A. (2009). Algunas especies raras o interesantes de Salamanca. Bol. Micol.
Lazarillo, 4: 5-12
GARC/09
Tabla 1. Trabajos cientícos que citan especies encontradas en la provincia de Salamanca, (orden cronológico).
(La clave identica cada artículo. Estas claves son utilizadas en la Tabla 2 para mencionar los trabajos. Por ej.: La columna GARCIA/2006 de la Tabla
2, hace referencia al trabajo citado en la Tabla 1 como: GARCIA BLANCO, A. (2006). El género Hysterangium en Castilla y León. Bol. Micol.
FAMCAL, 1: 47-54.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009) 43
Los Macromicetos en la provincia de Salamanca: Primera actualización de la revisión bibliográca
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Agaricus bitorquis Quél. Sacc.
!
Agaricus cupreobrunneus (Jul. Schäff. & Steer) Pilát
!
Agaricus excellens (F.H. Möller) F.H. Möller
!
Agaricus moelleri Wasser
!
Agaricus pampeanus Speg.
!
Agaricus porphyrizon P.D. Orton
!
Agrocybe pediades (Fr.) Fayod Sin.: Agrocybe semiorbicularis
!
Agrocybe praecox (Pers.) Fayod
!
Aleuria aurantia (Pers.) Fuckel
!
Aleurodiscus aurantius (Pers.) J. Schröt.
!
Aleurodiscus dextrinoideocerussatus Manjón, M.N. Blanco & G. Moreno
!
Amanita crocea (Quél.) Singer
!
Amanita eliae Quél.
!
Amanita excelsa var. excelsa (Fr.) P. Kumm.
!
Amanita excelsa var. spissa (Fr.) Neville & Poumarat Sin.: Amanita spissa
!
Amanita franchetii (Boud.) Fayod
!
Amanita ovoidea (Bull.) Link
!
Amaurodon mustialaensis (P. Karst.) Kõljalg & K.H. Larss.
!
Amphinema byssoides (Pers.) J. Erikss.
!
Ampulloclitocybe clavipes (Pers.) Redhead & all Sin.: Clytocibe clavipes
!
Amyloathelia amylacea (Bourdot & Galzin) Hjortstam & Ryvarden
!
Amylocorticiellum molle (Fr.) Spirin & Zmitr
!
Amylocorticium cebennense (Bourdot) Pouzar
!
Antrodia albida (Fr.) Donk
!
Antrodia sandaliae Bernicchia & Ryvarden
!
Antrodia vaillantii (DC.) Ryvarden
!
Antrodiella romellii (Donk) Niemelä
!
Arachnopeziza aurelia (Pers.) Fuckel
!
Armillaria gallica Marxm. & Romagn. Sin.: Armillaria bulbosa
!
Athelia acrospora Jülich
!
Athelia decipiens (Höhn. & Litsch.) J. Erikss.
!
Athelia epiphylla Pers.
!
Athelopsis glaucina (Bourdot & Galzin) Oberw. ex Parmasto
!
Boletus calopus Pers.
!
Boletus fechtneri Velen.
!
Boletus fragrans Vittad.
!
Boletus lupinus Fr.
!
Boletus moravicus Vacek Sin.: Xerocomus leonis
!
Boletus regius Krombh.
!
Boletus reticulatus Schaeff. Sin.: Boletus aestivalis
!
Botryobasidium asperulum (D.P. Rogers) Boidin
!
Botryobasidium candicans J. Erikss.
!
Botryobasidium laeve (J. Erikss.) Parmasto
!
Botryobasidium subcoronatum (Höhn. & Litsch.) Donk
!
Botryobasidium vagum (Berk. & M.A. Curtis) D.P. Rogers
!
Botryohypochnus isabellinus (Fr.) J. Erikss.
!
Bulbillomyces farinosus (Bres.) Jülich
!
Bulgaria inquinans (Pers.) Fr.
!
Byssomerulius corium (Pers.) Parmasto
!
Byssomerulius hirtellus (Burt) Parmasto
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009)44
Hernández Melchor, J.A. & Velasco Santos, J.M.
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Calocybe constricta (Fr.) Kühner ex Singer
!
Calocybe fallax (Sacc.) Redhead & Singer
!
Calvatia utriformis (Bull.) Jaap
!
Ceraceomyces sublaevis (Bres.) Jülich
!
Ceraceomyces sulphurinus (P. Karst.) J. Erikss. & Ryvarden
!
Ceraceomyces tessulatus (Cooke) Jülich
!
Ceriporia purpurea (Fr.) Donk
!
Ceriporia reticulata (Hoffm.) Domanski
!
Ceriporia viridans (Berk. & Broome) Donk
!
Ceriporiopsis consobrina (Bres.) Ryvarden
!
Chlorociboria aeruginascens (Nyl.) Kanouse ex C.S. Ramamurthi, Korf & L.R. Batra
!
Cinereomyces lenis (P. Karst.) Spirin
!
Cinereomyces vulgaris (Fr.) Spirin, Karstenia
!
Clavaria acuta Sowerby
!
Clavulina cinerea (Bull.) J. Schröt.
!
Clavulina coralloides (L.) J. Schröt.
!
Clavulinopsis laeticolor (Berk. & M.A. Curtis) R.H. Petersen
!
Clitocybe candida Bres. Sin.: Leucopaxillus candidus
!
Clitocybe maxima (Gaertn. & G. Mey.) P. Kumm.
!
Clitocybe vibecina (Fr.) Quél.
!
Coniophora arida (Fr.) P. Karst.
!
Coniophora fusispora (Cooke & Ellis) Cooke
!
Coniophora olivacea (Fr.) P. Karst.
!
Coniophora puteana (Schumach.) P. Karst.
!
Coprinopsis macrocephala (Berk.) Redhead & all. Sin.: Coprinus macrocephalus
!
Cordyceps militaris (L.) Link
!
Cortinarius caperatus (Pers.) Fr. Sin.: Rozites caperatus
!
Cortinarius cinnamomeoluteus P.D. Orton
!
Cortinarius mucosus (Bull.) Cooke
!
Cortinarius olearioides Rob. Henry
!
Cortinarius orellanus Fr.
!
Cortinarius stillatitius Fr.
!
Cristinia helvetica (Pers.) Parmasto
!
Cylindrobasidium evolvens (Fr.) Jülich
!
Cystoderma carcharias (Pers.) Fayod
!
Cystoderma fallax A.H. Sm. & Singer
!
Dacryobolus karstenii (Bres.) Oberw. ex Parmasto
!
Dacryobolus sudans (Alb. & Schwein.) Fr.
!
Daedalea quercina (L.) Pers.
!
Daldinia concentrica (Bolton) Ces. & De Not.
!
Diatrype stigma (Hoffm.) Fr.
!
Diatrypella quercina (Pers.) Cooke
!
Endogone flammicorona Trappe & Gerd.
!
Entoloma chalybaeum (Pers.) Noordel.
!
Entoloma phaeocyathus Noordel.
!
Entoloma rhodopolium (Fr.) P. Kumm.
!
Entoloma sericeum (Bull.) Quél.
!
Exidia saccharina Fr.
!
Exidia truncata Fr.
!
Ganoderma resinaceum Boud.
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas. (cont.)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009) 45
Los Macromicetos en la provincia de Salamanca: Primera actualización de la revisión bibliográca
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Geastrum coronatum Pers.
!
Geastrum rufescens Pers.
!
Geopora arenosa (Fuckel) S. Ahmad
!
Gloeocystidiellum porosum (Berk. & M.A. Curtis) Donk
!
Gloeoporus dichrous (Fr.) Bres.
!
Gomphidius roseus (Fr.) Fr.
!
Grifola frondosa (Dicks.) Gray
!
Gymnopilus suberis (Maire) Singer
!
Gymnopus fusipes (Bull.) Gray Sin.: Colybia fusipes
!
Gymnopus ocior (Pers.) Antonín & Noordel. Sin.: Colybia luteifolia
!
Hebeloma mesophaeum (Pers.) Quél.
!
Hebeloma populinum Romagn.
!
Hebeloma radicosum (Bull.) Ricken
!
Helvella costifera Nannf.
!
Helvella crispa (Scop.) Fr.
!
Helvella elastica Bull.
!
Helvella macropus (Pers.) P. Karst. Sin.: Macroscyphus macropus
!
Helvella queletii Bres.
!
Hericium cirrhatum (Pers.) Nikol.
!
Hexagonia nitida Durieu & Mont.
!
Hohenbuehelia petaloides (Bull.) Schulzer Sin.: Hohenbuehelia geogenia
!
Hydnellum concrescens (Pers.) Banker
!
Hydnellum ferrugineum (Fr.) P. Karst.
!
Hygrocybe coccinea (Schaeff.) P. Kumm.
!
Hygrocybe conica var chloroides (Malençon) Bon
!
Hygrocybe pratensis (Pers.) Bon Sin.: Cuphophyllus pratensis
!
Hygrocybe psittacina (Schaeff.) P. Kumm.
!
Hygrophorus agathosmus Fr.
!
Hygrophorus latitabundus Britzelm.
!
Hygrophorus russula (Schaeff.) Kauffman
!
Hyphoderma argillaceum (Bres.) Donk
!
Hyphoderma litschaueri (Burt) J. Erikss. & Å. Strid
!
Hyphoderma medioburiense (Burt) Donk
!
Hyphoderma occidentale (D.P. Rogers) Boidin & Gilles
!
Hyphoderma roseocremeum (Bres.) Donk
!
Hyphoderma setigerum (Fr.) Donk
!
Hyphodontia alutaria (Burt) J. Erikss.
!
Hyphodontia aspera (Fr.) J. Erikss.
!
Hyphodontia breviseta (P. Karst.) J. Erikss.
!
Hyphodontia cineracea (Bourdot & Galzin) J. Erikss. & Hjortstam
!
Hyphodontia floccosa (Bourdot & Galzin) J. Erikss.
!
Hyphodontia gossypina (Parmasto) Hjortstam
!
Hyphodontia juniperi (Bourdot & Galzin) J. Erikss. & Hjortstam
!
Hyphodontia nespori (Bres.) J. Erikss. & Hjortstam
!
Hyphodontia quercina (Pers.) J. Erikss.
!
Hyphodontia radula (Pers.) Langer & Vesterh.
!
Hyphodontia rimosissima (Peck) Gilb.
!
Hyphodontia sambuci (Pers.) J. Erikss.
!
Hyphodontia subalutacea (P. Karst.) J. Erikss.
!
Hypochnicium albostramineum (Bres.) Hallenb.
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas. (cont.)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009)46
Hernández Melchor, J.A. & Velasco Santos, J.M.
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Hysterangium inflatum Rodway
!
Inocybe calamistrata (Fr.) Gillet
!
Inocybe curvipes P. Karst.
!
Inocybe dulcamara (Alb. & Schwein.) P. Kumm.
!
Inocybe lacera var. lacera (Fr.) P. Kumm.
!
Inocybe xanthomelas Boursier & Kühner
!
Inonotus cuticularis (Bull.) P. Karst.
!
Junghuhnia nitida (Pers.) Ryvarden
!
Lactarius atlanticus Bon
!
Lactarius aurantiacus (Pers.) Gray Sin.: Lactarius mitissimus
!
Lactarius azonites (Bull.) Fr.
!
Lactarius rugatus Kühner & Romagn.
!
Lactarius semisanguifluus R. Heim & Leclair
!
Lactarius subumbonatus Lindgr.
!
Lactarius tesquorum Malençon
!
Lactarius uvidus (Fr.) Fr.
!
Lactarius volemus (Fr.) Fr.
!
Lactarius zonarius (Bull.) Fr.
!
Laeticorticium polygonioides (P. Karst.) Donk
!
Laetiporus sulphureus (Bull.) Murrill
!
Lanzia echinophila (Bull.) Korf
!
Laxitextum bicolor (Pers.) Lentz
!
Leccinellum corsicum (Rolland) Bresinsky & Manfr. Binder Sin.: Leccinum corsicum
!
Leccinellum lepidum (Bouchet ex Essette) Bresinsky & Manfr. Binder
!
Leccinum scabrum (Bull.) Gray
!
Leccinum versipelle (Fr. & Hök) Snell
!
Lentinus strigosus (Schwein.) Fr. Sin.: Panus rudis
!
Lenzitopsis oxycedri Malençon & Bertault
!
Lepiota aspera (Pers.) Quél.
!
Lepiota ochraceodisca Bon
!
Lepiota oreadiformis Velen
!
Lepiota subincarnata J.E. Lange Sin.: Lepiota josserandii
!
Lepista ricekii Bon
!
Lepista sordida (Schumach.) Singer
!
Leptoporus mollis (Pers.) Quél.
!
Leucocortinarius bulbiger (Alb. & Schwein.) Singer
!
Leucogyrophana mollusca (Fr.) Pouzar
!
Luellia recondita (H.S. Jacks.) K.H. Larss. & Hjortstam
!
Lycoperdon mammiforme Pers.
!
Macrolepiota affinis (Velen.) Bon
!
Macrolepiota fuligineosquarrosa Malençon
!
Macrolepiota gracilenta (Krombh.) Wasser
Marasmius collinus (Scop.) Singer
!
Melanoleuca cognata var. cognata (Fr.) Konrad & Maubl.
!
Melanoleuca excissa (Fr.) Singer
!
Merulius tremellosus Schrad.
!
Morchella elata Fr.
!
Morchella esculenta (L.) Pers. Sin.: Morchella conica
!
Morchella vulgaris (Pers.) Boud. Sin.: Morchella rotunda
!
Mucronella calva (Alb. & Schwein.) Fr.
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas. (cont.)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009) 47
Los Macromicetos en la provincia de Salamanca: Primera actualización de la revisión bibliográca
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Mycena alcalina (Fr.) P. Kumm.
!
Mycena corticola (Pers.) Gray
!
Mycoacia fuscoatra (Fr.) Donk
!
Mycoacia uda (Fr.) Donk
!
Omphalotus olearius (DC.) Singer
!
Otidea cochleata (Huds.) Fuckel
!
Oxyporus latemarginatus (Durieu & Mont.) Donk
!
Panaeolus semiovatus var. semiovatus (Sowerby) S. Lundell & Nannf.
Panus conchatus (Bull.) Fr.
!
Peniophora cinerea (Pers.) Cooke
!
Peniophora incarnata (Pers.) P. Karst.
!
Peniophora meridionalis Boidin
!
Peniophora nuda (Fr.) Bres.
!
Peniophora violaceolivida (Sommerf.) Massee
!
Peniophorella pallida (Bres.) K.H. Larss.
!
Peniophorella praetermissa (P. Karst.) K.H. Larss.
!
Peniophorella pubera (Fr.) P. Karst.
!
Perenniporia meridionalis Decock & Stalpers
!
Peziza vesiculosa Bull.
!
Phaeolus schweinitzii (Fr.) Pat.
!
Phanerochaete avellanea (Bres.) J. Erikss. & Hjortstam
!
Phanerochaete martelliana (Bres.) J. Erikss. & Ryvarden
!
Phanerochaete sanguinea (Fr.) Pouzar
!
Phanerochaete sordida (P. Karst.) J. Erikss. & Ryvarden
!
Phanerochaete tuberculata (P. Karst.) Parmasto
!
Phanerochaete velutina (DC.) Parmasto
!
Phellinus ferreus (Pers.) Bourdot & Galzin
!
Phellinus laevigatus (Fr.) Bourdot & Galzin
!
Phellinus populicola Niemelä
!
Phellinus pseudopunctatus A. David, Dequatre & Fiasson
!
Phellinus punctatus (Fr.) Pilát
!
Phellodon melaleucus (Sw. ex Fr.) P. Karst.
!
Phlebia lacteola (Bourdot) M.P. Christ.
!
Phlebia lilascens (Bourdot) J. Erikss. & Hjortstam
!
Phlebia livida (Pers.) Bres.
!
Phlebia ochraceofulva (Bourdot & Galzin) Donk
!
Phlebia rufa (Pers.) M.P. Christ.
!
Phlebia subochracea (Alb. & Schwein.) J. Erikss. & Ryvarden
!
Phlebia subserialis (Bourdot & Galzin) Donk
!
Phlebia tremelloidea (Bres.) Parmasto
!
Picoa juniperi Vittad.
!
Pionnotes cesatii (Thüm.) Sacc.
!
Plectania rhytidia (Berk.) Nannf. & Korf Sin.: Peziza rhytidia
!
Porostereum crassum (Lév.) Hjortstam & Ryvarden
!
Porostereum spadiceum (Pers.) Hjortstam & Ryvarden
!
Postia fragilis (Fr.) Jülich,
!
Postia hibernica (Berk. & Broome) Jülich
!
Postia leucomallella (Murrill) Jülich
!
Postia stiptica (Pers.) Jülich
!
Postia tephroleuca (Fr.) Jülich
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas. (cont.)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009)48
Hernández Melchor, J.A. & Velasco Santos, J.M.
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Psathyrella caput-medusae (Fr.) Konrad & Maubl.
!
Pseudotomentella flavovirens (Höhn. & Litsch.) Svr!ek
!
Pseudotomentella tristis (P. Karst.) M.J. Larsen
!
Psilocybe coprophila (Bull.) P. Kumm.
!
Pseudocraterellus undulatus (Pers.) Rausch. Sin.: Craterellus sinuosus
Pycnoporus cinnabarinus (Jacq.) P. Karst.
Radulomyces confluens (Fr.) M.P. Christ.
!
Ramaria comitis Schild
!
Ramaria decurrens (Pers.) R.H. Petersen
!
Ramaria fennica var. fennica (P. Karst.) Ricken
!
Ramaria flaccida var. crispula (Fr.) Schild
!
Ramaria flavescens (Schaeff.) R.H. Petersen
!
Ramaria mediterranea Schild & Franchi
!
Ramaria pallida (Schaeff.) Ricken
!
Ramaria stricta (Pers.) Quél.
!
Ramaria subbotrytis (Coker) Corner (1950)
!
Rhodocollybia butyracea f. asema (Fr.) Antonín, Halling & Noordel.
!
Rhodocollybia maculata (Alb. & Schwein.) Singer Sin.: Colybia maculata
!
Russula aurea Pers.
!
Russula cyanoxantha (Schaeff.) Fr. Sin.: Russula cutefracta
!
Russula cyanoxantha (Schaeff.) Fr. Sin.: Russula cyanoxantha f. peltereaui
!
Russula fragilis Fr.
!
Russula grata Britzelm. Sin.: Russula laurocerasi
!
Russula graveolens Romell
!
Russula heterophylla (Fr.) Fr.
!
Russula sororia Fr.
!
Russula turci Bres.
!
Sarcodon fuligineoviolaceus (Kalchbr.) Pat.
!
Sarcodon scabrosus (Fr.) P. Karst.
!
Schizopora flavipora (Berk. & M.A. Curtis ex Cooke) Ryvarden
!
Schizopora radula (Pers.) Hallenb.
!
Scleroderma cepa Pers.
!
Scopuloides hydnoides (Cooke & Massee) Hjortstam & Ryvarden
!
Scutellinia scutellata (L.) Lambotte
!
Scutiger pes-caprae (Pers.) Bondartsev & Singer Sin.: Albatrellus pes-caprae
!
Scytinostroma alutum Lanq.
!
Scytinostroma portentosum (Berk. & M.A. Curtis) Donk
!
Scytinostromella heterogenea (Bourdot & Galzin) Parmasto
!
Setchelliogaster tenuipes (Setch.) Pouzar
!
Sistotrema alboluteum (Bourdot & Galzin) Bondartsev & Singer
!
Sistotrema confluens Pers.
!
Sistotrema oblongisporum M.P. Christ. & Hauerslev
!
Sistotrema octosporum (J. Schröt. ex Höhn. & Litsch.) Hallenb.
!
Sistotrema porulosum Hallenb.
!
Sistotrema subtrigonospermum D.P. Rogers
!
Sistotremastrum niveocremeum (Höhn. & Litsch.) J. Erikss.
!
Skeletocutis amorpha (Fr.) Kotl. & Pouzar
!
Skeletocutis kuehneri A. David
!
Skeletocutis percandida (Malençon & Bertault) Jean Keller
!
Skeletocutis subincarnata (Peck) Jean Keller
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas. (cont.)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009) 49
Los Macromicetos en la provincia de Salamanca: Primera actualización de la revisión bibliográca
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Sowerbyella imperialis (Peck) Korf
!
Sparassis crispa (Wulfen) Fr.
!
Steccherinum fimbriatum (Pers.) J. Erikss.
!
Steccherinum ochraceum (Pers.) Gray
!
Stereum gausapatum (Fr.) Fr.
!
Stereum ochraceoflavum (Schwein.) Sacc.
!
Stereum reflexulum D.A. Reid
!
Strobilurus tenacellus (Pers.) Singer
!
Subulicystidium longisporum (Pat.) Parmasto
!
Suillus bovinus (Pers.) Roussel
!
Tapinella atrotomentosa (Batsch) !utara Sin.: Paxillus atrotomentosus
!
Tarzetta cupularis (L.) Svr"ek
!
Tephrocybe rancida (Fr.) Donk
!
Terana caerulea (Lam.) Kuntze
!
Terfezia arenaria (Moris) Trappe
!
Thelephora caryophyllea (Schaeff.) Pers.
!
Thelephora palmata (Scop.) Fr.
!
Tomentella botryoides (Schwein.) Bourdot & Galzin
!
Tomentella bryophila (Pers.) M.J. Larsen
!
Tomentella fibrosa (Berk. & M.A. Curtis) Kõljalg
!
Tomentella galzinii Bourdot
!
Tomentella lapida (Pers.) Stalpers
!
Tomentella lateritia Pat.
!
Tomentella lilacinogrisea Wakef.
!
Tomentella radiosa (P. Karst.) Rick
!
Tomentella stuposa (Link) Stalpers
!
Tomentellopsis echinospora (Ellis) Hjortstam
!
Trametes ochracea (Pers.) Gilb. & Ryvarden
!
Trechispora cohaerens (Schwein.) Jülich & Stalpers
!
Trechispora farinacea (Pers.) Liberta
!
Trichaptum abietinum (Dicks.) Ryvarden
!
Trichaptum fuscoviolaceum (Ehrenb.) Ryvarden
!
Tricholoma fracticum (Britzelm.) Kreisel
!
Tricholoma imbricatum (Fr.) P. Kumm.
!
Tricholoma portentosum (Fr.) Quél.
!
Tricholoma stiparophyllum (S. Lundell) P. Karst. Sin.: Tricholoma pseudoalbum
!
Tricholoma ustale (Fr.) P. Kumm.
!
Tuber borchii Vittad. Sin.: Tuber albidum
!
Tubulicrinis angustus (D.P. Rogers & Weresub) Donk
!
Tubulicrinis borealis J. Erikss.
!
Tubulicrinis calothrix (Pat.) Donk
!
Tubulicrinis sororius (Bourdot & Galzin) Oberw.
!
Tubulicrinis subulatus (Bourdot & Galzin) Donk
!
Tulostoma brumale Pers.
!
Tyromyces subcaesius A. David,
!
Ustilago maydis (DC.) Corda
!
Vararia maremmana Bernicchia
!
Volvariella pusilla (Pers.) Singer
!
Vuilleminia alni Boidin Lanq. & Gilles
!
Vuilleminia comedens (Nees) Maire
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas. (cont.)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 41-50 (2009)50
Hernández Melchor, J.A. & Velasco Santos, J.M.
GARC/06
DANI/07
GORJ/07
LLIS/08
PARR/08
GORJ/08a
GORJ/08b
GORJ/08c
GORJ/09a
GORJ/09b
GORJ/09c
GORJ/09d
VELA/09
GARC/09
Vuilleminia cystidiata Parmasto
!
Xenasma pruinosum (Pat.) Donk
!
Xenasmatella vaga (Fr.) Stalpers
!
Xerula pudens (Pers.) Singer Sin.: Xerula longipes
!
Xerula radicata (Relhan) Dörfelt Sin.: Oudemansiella radicata
!
Xylaria hypoxylon (L.) Grev.
!
Xylobolus illudens (Berk.) Boidin
!
Xylodon pruni (Lasch) Hjortstam & Ryvarden
!
Zelleromyces giennensis Mor.-Arr., J. Gómez & Calonge
!
ESPECIE
Tabla 2. Macromicetos de Salamanca. Base de datos elaborada a partir de referencias bibliográcas. (cont.)
Referencias
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lamanca (II): nuevas citas. Bol. Micol. Lazarillo, 4: 23-40.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 51-54 (2009) 51
E
l mundo de los hongos es complejo y fascinante y sus
diversos ciclos de vida reejan una variedad de estra-
tegias diferentes encaminadas a la perpetuación de los
distintos organismos tanto en el espacio como en el tiempo.
Muchos de ellos, encuentran su fuente de nutrientes en los
restos en descomposición de otros organismos, ya sean ani-
males, vegetales o incluso otros hongos, comportándose de
un modo sapróto. La mayoría, establecen relaciones sim-
bióticas con multitud de vegetales en los que el balance es
más o menos benecioso para ambos. En ciertas ocasiones,
se comportan de un modo negativo actuando como parásitos,
generalmente de organismos vegetales. Numerosos son los
ejemplos que encontramos en la relación planta-hongo, en
los cuales, unas veces el hongo se comporta como parásito
activo contribuyendo al decaimiento y muerte del vegetal y
otros, en los que más comúnmente el hongo aprovecha zo-
nas debilitadas o ya muertas utilizándolas como substrato
y zona de fructicación. Asi mismo, ciertos animales utili-
zan el substrato degradado por
la acción descomponedora de
los hongos para construir sus
lugares de residencia; pájaros
carpintero, hormigas, termi-
tas, escarabajos y arañas entre
otros, establecen una particular
relación con ciertos hongos los
cuales con su labor reblandece-
dora facilitan el uso de diferen-
tes partes del vegetal por estos
animales.
Los hongos descomponedo-
res de la madera constituyen un
conjunto de organismos extre-
madamente importante en la di-
námica de los ecosistemas encargándose de descomponer los
componentes mayoritarios de los restos vegetales, degradán-
dolos e incorporándolos al ciclo de los nutrientes. La madera
está compuesta mayoritariamente de celulosa, hemicelulosa
y lignina. A grandes rasgos, existen dos clases principales de
hongos degradadores de madera, aquellos que descomponen
los tres citados componentes dejando los restos vegetales
con un aspecto blanquecino y broso (podredumbre blanca)
y aquellos que sólo son capaces de degradar celulosa y he-
micelulosa conriendo a los restos de madera una coloración
marrón y un aspecto fragmentado en polígonos cúbicos (po-
dredumbre marrón).
En ciertos hongos, los límites entre parasitismo y sapro-
tismo no están claramente denidos y son fácilmente fran-
queables. Muchas especies que pueden actuar en ciertos
momentos como parásitos, continúan fructicando varios
años después en los restos ya muertos del vegetal. Algunos
géneros de hongos corticioides utilizan como substrato zo-
nas muertas o debilitadas incluso aún adheridas a la planta
viva, otras simplemente aprovechan los escasos nutrientes
que aportan zonas de la corteza de ramas y troncos para de-
sarrollar sus inconspicuas fruc-
ticaciones. Más curioso aún,
algunos establecen relaciones
micorrízicas con la planta du-
rante buena parte de su ciclo
vital, necesitando para el pe-
riodo de su fructicación zonas
más o menos degradadas de los
restos vegetales. Otros actúan
como agentes de control bioló-
gico depredando nemátodos y
otros organismos.
En el presente trabajo se
recoge la observación de fruc-
ticaciones de Meripilus gi-
ganteus (Pers.) P. Karst. sobre
el haya de Herguijuela (Fagus sylvatica L.) y se realiza una
pequeña reexión acerca de los posibles daños que el hon-
go puede causar sobre el emblemático árbol.
El haya de Herguijuela,
por su avazada edad, por la acción de
Meripilus giganteus,
que provoca la descomposición
y muerte del tejido vegetal, y por alguna
otra razón más encuentra
su estado de salud amenazado.
MERIPILUS GIGANTEUS Y EL HAYA DE
HERGUIJUELA DE LA SIERRA,
CRÓNICA DE UNA MUERTE ANUNCIADA
Sergio Pérez Gorjón.
Dpto. de Botánica. Universidad de Salamanca. Avda. Licenciado Méndez Nieto s/n. 37007. Salamanca.
E-mail: spgorjon@usal.es
re s u m e n : Se da cuenta de la furcticación y los efectos de Meripilus giganteus sobre el haya de Herguijuela de
la Sierra, uno de los árboles más emblemáticos de la provincia de Salamanca.
p
a l a b r a s C l a v e : Fagus sylvatica, poliporo gigante, hongos degradadores, saprotismo, parasitismo.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 51-54 (2009)52
Pérez Gorjón, S.
Descripción de los especímenes
Meripilus giganteus (Pers.) P. Karst., Bidr. Känn. Finl.
Nat. Folk 37: 33 (1882), Fig. 1.
Basiónimo: Boletus giganteus Pers., Neues Mag. Bot. 1:
108 (1794)
Descripción: Basidioma anual, pileado, con crecimiento
imbricado, numerosos píleos semicirculares o abeliformes
agrupados partiendo de una base o estípite común, todo el
cuerpo fructífero alcanza por lo común 20-40 cm de diáme-
tro, los píleos aislados con dimensiones de 10-20 cm y un
espesor de 1-2 cm; carnoso en fresco y frágil en seco; estípite
corto, mazudo; supercie pileica lisa, recubierta de minúscu-
las escamas, zonada en bandas de color marrón; himenóforo
tubular, tubos de hasta 10 mm de longitud, poros redondea-
dos, pequeños, 3-5 por mm, con los disepimentos de enteros
a lacerados, supercie poroide de color crema que oscurece
al roce y ennegrece con la edad; contexto broso a coriáceo,
blanquecino, con un espesor de 10-15 mm. Sistema de hifas
monomítico (pseudodimítico); hifas generativas con septos
simples, algunas fíbulas aisladas presentes, hifas de la trama
con pared delgada, de 3-5 μm, y abundantes ramicaciones,
hifas del contexto con pared engrosada, sin apenas ramica-
ciones y un espesor de 5-10 μm (recuerdan a hifas esquelé-
ticas). Cistidios ausentes, presentes en el himenio cistidiolos
cilíndrico-fusiformes de 20-40 x 5-8 μm, con pared delgada,
con simple septo en la base. Basidios claviformes, 20-40 x
7-10 μm, 4 esterigmas y simple septo basal. Basidiósporas
elipsoides a subglobosas, 6-7(8) x 4.5-6 μm, lisas, con pared
delgada, hialinas, inamiloides y no cianólas.
Material estudiado: SALAMANCA: Herguijuela de la
Sierra, 29TQE4781, 808 m, en base radicular de Fagus syl-
vatica, 18.12.2008, leg. & det. S. Pérez Gorjón, SPG 2365,
SALA-Fungi 4176.
Discusión
Meripilus giganteus, conocido comúnmente como “po-
líporo gigante”, fructica generalmente asociado a raíces o
a la base de árboles planifolios, muy frecuentemente sobre
Fagus sylvatica, más raramente en coníferas. Aunque no es
muy común, se encuentra ampliamente distribuido en Eu-
ropa más frecuentemente en el centro y sur del continente,
circumboreal en el hemisferio Norte (RYVARDEN & GIL-
BERTSON, 1994; BERNICCHIA, 2005) y ampliamente dis-
tribuido en la Península Ibérica (MELO & al., 2007); en la
provincia de Salamanca citado previamente por LADERO
& al. (1987). Su presencia en Norte América es discutida
(LINDER, com. pers.) y a los especímenes americanos se les
ha venido denominando tradicionalmente como Meripilus
sumstinei (Murrill) M.J. Larsen & Lombard (LARSEN &
LOMBARD, 1988); futuros estudios moleculares y de inter-
fertilidad son necesarios para establecer y claricar la iden-
tidad de estos dos táxones y desde estas líneas animo a parti-
cipar en la recolección de especímenes frescos y su envío al
autor (para normas de recolección, etiquetado y preservación
véase VELASCO, 2007).
M. giganteus causa una podredumbre blanca intensa y
activa (BERNICCHIA, 2005; SCHWARZE & FINK, 2008)
provocando degradación de los tejidos vegetales y varios
tipos de cavidades a nivel de la pared celular que dieren
respecto del tipo de célula y del hospedador; la formación
de estas cavidades y huecos viene asimismo precedida por
Fig. 1. Basidioma de Meripilus giganteus en la base del haya de la Herguijuela de la Sierra.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 51-54 (2009) 53
Meripilus giganteus y el haya de Herguijuela de la Sierra, crónica de una muerte anunciada
una deslignicación extensiva e intensa que provocan la des-
composición y muerte del tejido vegetal (cf. SCHWARZE &
FINK, 2008). En los dos últimos años se han podido observar
varios basidiomas fructicando en la base radicular del haya
de Herguijuela; durante el otoño de 2007 una fructicación
aislada, durante el otoño-invierno de 2008 se han contabili-
zado cinco (Fig. 2). Considerado por algunos como un activo
y temido parásito, numerosas son las empresas que existen
en Internet que se dedican al tratamiento (y tala) de los árbo-
les enfermos llegando a armar que la aparición reiterada de
fructicaciones constituye un inminente riesgo para la super-
vivencia del árbol (STROUTS & WINTER, 2000). En el as-
pecto positivo, algunos estudios parecen indicar que ciertos
compuestos asilados de M. giganteus pudieran actúar como
inmunosupresores y presentar cierto efecto anticancerígeno
(NARBE & al., 1990; TOMASI & al., 2004).
El origen del haya de Her-
guijuela es dudoso (ROCHA AL-
FONSO, 1986); algunas opinio-
nes apoyan su origen cultivado,
otras discuten diferentes hipótesis
como relicto de antiguos hayedos
que pudieron perdurar desde la
última glaciación (cf. DONATE-
LLA, 2008; TINNER & LOTTER,
2006); a este respecto caben des-
tacar también las formaciones de
roble carballo (Quercus robur L.)
en los valles próximos a San Mar-
tín del Castañar, las más meridio-
nales de la Península Ibérica. Sea
como fuere, el haya de Herguijuela
es sin duda el árbol más singular
de la provincia de Salamanca y
ya sea por su avanzada edad, su
estado de salud, por la acción del
políporo gigante, o por todas ellas
y alguna otra más, se encuentra
amenazado. Los tratamientos de
eliminación del hongo son, en la
gran mayoría de los casos, cier-
tamente inecaces y al árbol no
le sirve de mucho, como se pueda
suponer, eliminar los carpóforos
del hongo o las partes afectadas de
la planta. El hongo coloniza, sin
manifestarse patentemente duran-
te largos periodos de tiempo, dife-
rentes tejidos vegetales internos y
la fructicación del mismo es sólo
una señal de que se han dado las
condiciones adecuadas para ello,
generalmente cuando la planta
comienza a perder vitalidad en la
delicada y particular coexistencia
que ambos organismos mantienen
durante años. En la naturaleza no existen buenos ni malos,
cada uno tiende a perdurar en el tiempo y en el espacio según
la estrategia que la selección natural ha considerado más exi-
tosa. El emblemático haya ha perdurado hasta nuestros días
y no podemos determinar exactamente por cuanto tiempo
más. La desaparición del singular árbol traerá, desde nuestra
percepción, algunas consecuencias irreparables al tratarse de
un estandarte socio-económico de la zona y en parte tam-
bién, cierta nostalgia, pero con seguridad servirá de substrato
para el desarrollo de decenas de especies, tanto hongos como
animales, que aguardan el momento. Sus restos servirán para
albergar otras interesantes formas de vida, por lo que desde
un punto de vista cientíco y conservacionista apelamos a
que los mismos permanezcan en el sitio, sin ser recogidos o
alterados, porque incluso en la muerte, la vida se abre inexo-
rablemente camino.
Fig. 2. Localización de las fructicaciones de Meripilus giganteus en 2008.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 51-54 (2009)54
Pérez Gorjón, S.
Referencias
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Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009) 55
A
ctualmente, el consumidor ha aumentado su sensibi-
lidad ante las propiedades de los productos alimenti-
cios, busca mayor calidad, seguridad y propiedades
nutritivo-saludables que puedan aportar. Por este motivo,
han aparecido en el mercado todo tipo de productos que las
empresas nos presentan con propiedades nutritivas especia-
les y saludables.
Es indudable el interés que suscita el mundo de las setas
entre la población, y cada temporada es mayor el número
de nuevos acionados que salen al campo a la búsqueda y
captura de sus especies favoritas. Se ha incrementado su
uso como alimento en las dietas terapéuticas, por sus mil y
una propiedades: nutritivas, adelgazantes, hipocalóricas, va-
ciantes, anticancerígenos, etc., y se
suministra información a los consu-
midores sobre la riqueza de tal o cual
alimento en ciertos nutrientes por los
efectos beneciosos para la salud.
Este trabajo está relacionado con
la composición nutricional de las se-
tas y los benecios saludables de las
mismas, pues parece que exista una
especie fúngica para prevenir y/o cu-
rar cada enfermedad, ¿son mágicas?
Para poder realizar una declaración nutricional o de pro-
piedades saludables de un alimento, las empresas tienen que
cumplir una normativa europea cada vez más estricta para
evitar que los alimentos se promocionen con propiedades que
realmente no tienen. Además, las promociones con esas decla-
raciones para atraer la atención del público deben basarse en
evidencias cientícas contrastadas y reales. Parece interesante
evaluar el perl nutricional medio de las setas y comprobar si
cumplen las normas sobre declaraciones nutricionales legisla-
das por la autoridad europea. Por este motivo, se ha obtenido
el perl nutricional (concentración de nutrientes) de las setas
con sus unidades de medida y, a través de ellos, se ineren las
conclusiones que más adelante se detallan.
No compramos nutrientes, compramos alimentos y estos
se combinan y complementan para construir la base de la
gastronomía propia de nuestra cultura. La alimentación es
un instrumento esencial de la promoción de la salud y de
gran ecacia como medio terapéutico. A diferencia de otros
factores, como los genéticos, en el
caso de la dieta tenemos la posi-
bilidad de modicarla como una
medida preventiva o para retrasar
los efectos de la enfermedad. Múl-
tiples estudios relacionan la dieta
y las enfermedades crónicas como
las cardiovasculares, obesidad,
diabetes mellitus y algunos tipos
de cáncer; y han puesto de mani-
esto que dieta y salud caminan
juntas. Para que una dieta sea adecuada y saludable debe ser
suciente, equilibrada, variada, armónica, adecuada a las
condiciones de edad, sexo, situación biológica, gustos, há-
bitos, cultura, etc. Además debe contribuir a prevenir las en-
fermedades mencionadas anteriormente. Níngún alimento es
La setas tienen un perl
nutricional similar al grupo de
verduras-hortalizas, y se
podría armar que tienen una
serie de benecios saludables
DIETAS Y SETAS:
DECLARACIONES NUTRICIONALES Y PROPIEDADES
Carlos González Iglesias.
C/ Lepanto, 8. 3º B. 37003 – SALAMANCA
E-mail: carloslepanto@hotmail.com
re s u m e n : Se determina y valora el perl nutricional medio de las setas comprobando el valor nutricional, las
alegaciones-declaraciones nutricionales y propiedades saludables que cumplen. Servirá de información sobre
ventajas-inconvenientes de su consumo así como, de las funciones en la dieta equilibrada “mediterránea” e hi-
pocalórica. Según los resultados, consumimos un alimento saludable con una signicativa cantidad de algunos
nutrientes. El consumidor no debe interpretar que la setas son un “buen alimento” y comer demasiadas, ya que
aisladamente no tendrá signicado. No existen buenos o malos alimentos sino buenas o malas dietas. Desde
el punto de vista dietético el perl nutricional medio de las setas es similar al grupo de verduras - hortalizas, y
se podría armar que tienen una serie de benecios saludables: hipocalóricas, bajo índice glucémico, saciante,
enlentece el vaciamiento gástrico, gran contenido en agua, disminuye el apetito, etc.
p
a l a b r a s C l a v e : nutrientes de setas, cantidad diaria recomendada (CDR), perl nutricional, dieta hipocalórica
equilibrada, setas comestibles.
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009)56
González Iglesias, C.
en sí mismo un medicamento. No existen alimentos buenos
y malos; todos forman parte de una dieta equilibrada y debe-
mos consumirlos con moderación. La alimentación deber ser
equilibrada y variada, agradable y de calidad sensorial que la
haga apetecible. Aprender a comer es un hábito esencial para
mejorar nuestro rendimiento físico e intelectual, mantener
un adecuado estado de ánimo y aumentar nuestra calidad de
vida. La adecuada interpretación del etiquetado nutricional
nos puede ayudar a cumplir estos objetivos.
Material y métodos
Para realizar este trabajo se han utilizado los materiales
que a continuación se describen:
Tablas de composición de alimentos:
Para obtener el perl nutricional “medio” de las setas
silvestres se han utilizado distintas tablas de composición
de alimentos españolas –UCM (Universidad Complutense
de Madrid) y CESNID (Centro de Enseñanza Superior de
Nutrición y Dietética)- y americanas como la del USDA
(Departamento de Agricultura de Estados Unidos). En es-
tas se recogen datos en g, mg, µg, etc. sobre el contenido
medio de nutrientes que proporcionan los alimentos cuando
son consumidos por cada 100 g de porción comestible (lo
que realmente consumimos tras eliminar los restos que no
se pueden ingerir) y en crudo (los tratamientos culinarios,
como la cocción, producen pérdidas importantes de algunas
vitaminas). Son la base para poder transformar alimentos en
energía y nutrientes. Se debe tener en cuenta que la compo-
sición nutricional de cualquier grupo de alimentos, aunque
compartan valores bromatológicos comunes, es heterogénea
y siempre existen excepciones según variedad y especie que
pueden alejarse bastante de la media (superior-inferior) en
determinados nutrientes. Otros factores como el sustrato,
grado de madurez, forma de conservación, etc. inuyen en la
composición nutricional.
Legislación alimentaria:
Directivas y Reglamentos comunitarios (de la Unión Eu-
ropea) obligatorios en todos los estados miembros que regu-
lan el etiquetado, declaraciones nutricionales y propiedades
saludables en los alimentos.
Reglamento (CE) nº 1924/2006 (última modicación y co-
rrección de errores 2007) del Parlamento Europeo y del Con-
sejo relativo a las declaraciones nutricionales y de propiedades
saludables en los alimentos. Supone una homogeinización de
la legislación europea sobre etiquetado de las declaraciones
nutricionales, incluidas las relativas a la salud. El objetivo es
garantizar una información correcta en el etiquetado de los ali-
mentos, evitando informaciones engañosas o poco claras para
el consumidor. Para mejor comprensión del estudio se resume
el contenido del Reglamento en el anexo I.
El anterior Reglamento complementa la Directiva
2000/13/CE relativa al etiquetado que prohíbe la informa-
ción que puede inducir a error al consumidor o que atribuya
propiedades medicinales a los alimentos.
En el marco de la Unión Europea, las alegaciones sobre
los productos alimenticios vienen denidas por la Directi-
va 90/496/CEE que regula el etiquetado sobre propiedades
nutritivas, así como la directiva 2000/13/CE que regula el
etiquetado presentación y publicidad de los productos ali-
menticios. Ambas normas establecen como principio gene-
ral básico que todas las alegaciones deberán ser de tal na-
turaleza que no induzcan a error al consumidor, y prohíben
expresamente que las alegaciones atribuyan a un producto
propiedades de prevención, terapéutica o curativas de una
enfermedad humana.
Reglamento (CE) Nº 353/2008 de la Comisión por el que
se establecen normas de desarrollo para las solicitudes de
autorización de declaraciones de propiedades saludables con
arreglo al artículo 15 del Reglamento 1924/2006.
Requerimientos y recomendaciones nutricionales:
Recomendaciones nutricionales: son las cantidades de
nutrientes esenciales consideradas sucientes para satisfacer
las necesidades de, prácticamente, todos los individuos sa-
nos de un grupo de población, y la cantidad media de energía
requerida por los mismos.
Requerimiento nutricional: denominado también “ne-
cesidades nutricionales”, se denen como la cantidad de
nutrientes que debe ingerir un individuo para evitar la en-
fermedad, mantener un estado nutricional y desarrollarse
correctamente, garantizando, en los niños un crecimiento
normal.
Ingestas de referencia: En la Unión Europea son las
Cantidades Diarias Recomendadas (CDR, en inglés RDA).
Las RDA (Recommended Daily Allowances) o CDR son
todavía utilizadas legalmente para expresar la cantidad de un
determinado nutriente contenida en un alimento por 100 g o
100 ml de porción o dosis recomendadas. Posiblemente, se-
rán sustituidas por los Valores de Referencia para el Etique-
tado (en inglés RLV) cuando se actualice la directiva europea
que regula su utilización durante el año 2009.
Las CDR son los valores de referencia para juzgar el
aporte nutricional de los productos con etiquetado; es decir,
una estandarización de las ingestas recomendadas.
Perl nutricional de energía y macronutrientes en dieta
equilibrada de un adulto sano:
Energía: la suciente para mantener un IMC (Índice de Masa
Corporal) entre 20 y 25.
Hidratos de carbono: >50 % Kcal totales.
Lípidos: < 30-35% Kcal totales.
Proteínas: 10-15 % Kcal totales.
Fibra: 25-30 g/día
Factores de conversión:
Para el cálculo del valor energético a declarar en la etiqueta.
Hidratos de carbono (salvo polialcoholes): 4 kcal/g
Polialcoholes: 2,4 kcal/g
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009) 57
Dietas y setas: declaraciones nutricionales y porpiedades saludables
Proteínas: 4 kcal/g
Grasas: 9 kcal/g
Alcohol (etanol): 7 kcal/g
Ácidos orgánicos: 3 kcal/g
Fibra alimentaria: 2 kcal/g
Hoja de cálculo:
Se ha utilizado una hoja de cálculo sobre la que se ha
volcado el perl nutricional de varias especies de setas, sus
nutrientes y sus unidades de medida, obtenidos de las tablas
de composición de alimentos –USDA, CESNID y UCM- y
se ha calculado los valores bromatológicos medios (resulta-
dos) de cada nutriente que gura en las directivas, sus unida-
des correspondientes y el porcentaje, que una ración cubre,
respecto a las cantidades diarias recomendadas de energía y
nutrientes.
Igualmente, se ha obtenido el perl nutricional medio de
varias especies de setas en energía, macronutrientes y oligo-
elementos (obtenidos de las tablas de composición de alimen-
tos anteriormente descritas). Se llevaron los datos de las espe-
cies a la hoja de cálculo para posteriormente obtener el perl
nutricional medio (valores bromatológicos medios). Se ha
realizado una comparativa con la composición nutricional me-
dia de verduras y hortalizas para comprobar su similitud con
este grupo de alimentos, y se describe la verdadera utilidad
de las setas en las dietas terapéuticas y en una dieta hipocaló-
rica equilibrada. También se han realizando los cálculos co-
rrespondientes que se describen en el apartado de resultados,
comprobando si cumplen o no las condiciones que se aplican a
las declaraciones nutricionales de la legislación alimentaria. A
continuación se ha elaborado una tabla resumen con códigos
de colores (verde-cumple; rojo-no cumple) para resumir lo
más esquemáticamente posible el gran número de condiciones
aplicables. Mediante el análisis de los datos obtenidos se pue-
de deducir la importancia nutricional de las setas.
Resultados y discusión
Perl nutricional medio (P. N. M.) de las setas
El trabajo realizado, teniendo en cuenta que los compo-
nentes de la dieta total obtenidos del conjunto de alimentos
se puede dividir en nutrientes y no nutrientes, se centra
en los primeros. El hombre para mantener la salud, desde el
punto de vista nutricional, necesita consumir a través de los
alimentos aproximadamente 50 nutrientes. Junto con la ener-
gía o las calorías, obtenidas a partir de grasas, hidratos de
carbono y proteínas, necesitamos ingerir con los alimentos 2
ácidos grasos y 8 aminoácidos esenciales, unos 20 minerales
y 13 vitaminas.
Primeramente, se ha creado una tabla (tabla 2) con la
composición media nutricional de las setas (columna ama-
VITAMINAS Y
SALES MINERALES
CDR
Vitamina A (μg) = retinol 800
Vitamina D (μg) 5
Vitamina E (mg) = alfa-tocoferol 12
Vitamina K (μg) 75
Vitamina C (mg) 80
Tiamina (mg) - B1 1,1
Riboavina (mg) B 2 1,4
Niacina (mg) B3 16
Vitamina B6 (mg) 1,4
Ácido fólico (μg) 200
Vitamina B12 (μg) = cianocobalamina 2,5
Biotina (μg) - B7 -B8 -H 50
Ácido pantoténico (mg) 6 6
Potasio (mg) 2000
Cloruro (mg) 800
Calcio (mg) 80
Fósforo (mg) 700
Magnesio (mg) 375
Hierro (mg) 14
Zinc (mg) 10
Cobre (mg) 1
Manganeso (mg) 2
Fluoruro (mg) 3
Selenio (μg) 55
Cromo (μg) 40
Molibdeno (μg) 50
Yodo (μg) 150
Tabla 1. Vitaminas y sales minerales que pueden detectarse y sus canti-
dades diarias recomendadas (CDR), según modicación de la Directiva
90/496/CEE publicada en 2008. Anexo I.
Componentes de la dieta
Nutrientes
No nutrientes
Dieta total, conjunto de todos los alimentos
N = 50
(10.000 fitoquímicos bioactivos)
(Watson, 2001)
Aditivos y
contaminantes
Componentes naturales
N = ???
FP
Fig. 1. Componentes de una dieta equilibrada.
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009)58
González Iglesias, C.
Energía y
nutrientes
Unidades
de medida
P. N. M.
de setas
Porcentaje
de la
C.D.R.
Riqueza en
nutrientes
P. N. M.
verduras –
hortalizas
Comparativa
setas/verdu-
ras-hortalizas
Energía kcal. 29 1,45 Baja 25,55 113,51
Agua g 91,93 9,19 (1) 69,26 132,73
Proteína total g 3,74 0,75 Baja 1,52 246,03
Lípidos totales g 0,73 0,33 Baja 0,28 259,4
Ácidos grasos saturados g 0,13 0,06 Baja 0,06 195,3
Ácidos gr. monoinsaturados g 0,03 0,01 Baja 0,03 100,75
Ácidos gr. poliinsaturados g 0,44 0,2 Baja 0,12 370,32
Colesterol mg 0 0 Baja 0
Glúcidos totales g 1,13 0,23 Baja 3,35 33,62
Azucares digeribles g 0,36 0,07 Baja 1,81 19,93
Polisacáridos digeribles g 0,2 0,04 Baja 1,46 13,66
Fibra alimentaria total g 3,26 12,7 Media 2,23 146,46
Etanol g 0 0 0
Sodio mg 6,14 0,2 Baja 17,55 34,99
Potasio mg 370 18,5 Fuente 213,81 173,05
Calcio mg 7,56 0,95 Baja 40,97 18,45
Magnesio mg 11,64 3,1 Baja 15,58 74,71
Fósforo mg 81,4 11,63 Media 35,42 229,82
Hierro mg 2,38 16,96 Fuente 0,9 263,89
Zinc mg 0,5 4,96 Baja 0,24 207,78
Níquel mcg 7,4 4,03 183,52
Cromo mcg 17 42,5 Alta 2,75 617,82
Flúor mcg 20 1,33 Baja 7,61 262,71
Cloro mcg 67 28,87 232,07
Yodo mcg 15,85 10,57 Baja-media 4,32 366,68
Manganeso mg 0,08 3,93 Baja 0,19 40,56
Cobre mg 0,35 35,27 Alta 0,05 683,29
Selenio mcg 7,77 14,2 Media 0,82 951,65
Pantoténico (B5) mg 2,85 47,5 Alta 0,22 1280,43
Vitamina K mcg 9,33 12,44 Baja-media 82,61 11,3
Vitamina D mcg 1,24 24,84 Alta 0,34 366,39
Vitamina E (tocoferol) mg 0,1 0,83 Baja 0,64 15,66
Vitamina B1 (tiamina) mg 0,09 7,84 Baja-media 0,06 140,64
Vitamina B2 (riboavina) mg 0,26 18,6 Media 0,06 403,62
Niacina B3 mg 5,27 32,94 Alta 0,73 722,88
Vitamina B6 mg 0,09 6,77 Baja-media 0,12 79,43
Ácido fólico mcg 13,5 6,75 Baja-media 51,29 26,32
Vitamina B12 mcg 0,01 0,32 Baja 0
Vitamina C mg 4,42 5,53 Baja-media 27,84 15,88
Vitamina A (retinol) mcg 108,5 13,5 Media 168,06 64,56
Tabla 2. Nutrientes de setas y su comparativa con verduras-hortalizas. P.N.M.: perl nutricional medio. Comparativa: (P.N.M.
s
/ P.N.M.
v-h)
) x 100
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009) 59
Dietas y setas: declaraciones nutricionales y porpiedades saludables
rilla o columna 3), obtenida de las tablas de composición de
alimentos, y una comparativa con los valores medios de 31
especies de verduras y hortalizas (columna verde o columna
6). En las columnas 1 y 2 aparecen los macronutrientes y mi-
cronutrientes, con sus unidades de medida, respectivamente.
En la columna 7 con el encabezamiento “comparativa” apa-
rece expresando, en %, la relación entre P.N.M. de las setas
y P.N.M. verduras-hortalizas. En la columna 4 se muestra
la energía proporcionada por los nutrientes de las setas ex-
presados en porcentaje sobre las CDR. En la columna 5 se
reeja la riqueza (alta-media-baja) en cada nutriente.
Los resultados indican que las setas tienen una aprecia-
ble concentración y variedad de nutrientes, similar al grupo
de alimentos verduras-hortalizas.
El porcentaje de agua es elevado, tomando como refe-
rencia 100 g de porción comestible de las setas, y ayuda a la
hidratación corporal total del líquido elemento procedente de
los alimentos. En cuanto a la composición nutricional, desta-
can las cantidades de bajas macronutrientes y las cantidades
signicativas de vitaminas y sales minerales.
Son pobres en proteínas; sin embargo, contienen todos
los aminoácidos esenciales (aquellos que no pueden sinte-
tizarse en el organismo humano, por lo que deben ser ob-
tenidos de la dieta); por ello, podemos decir que la calidad
biológica de las setas es buena, pero en concentración muy
baja, equivalente a 1/10 de la proteína de la clara de huevo
que se toma como patrón y similar en perl nutricional a
verduras y hortalizas.
Prácticamente no contienen lípidos, no tienen colesterol
y la concentración de ácidos grasos saturados es mínima. Por
lo que las setas ayudan a regular las hiperlipemias e hiperco-
lesteronemias.
El bajo contenido en hidratos de carbono digeribles o
asimilables es muy interesante, ya que son de índice glucé-
mico bajo, importante en las dietas para diabéticos ya que
elevan poco la glucemia.
Los niveles de bra (por su contenido en hidratos de car-
bono no digeribles, principalmente quitina) son signicativos
y regulan la motilidad gastrointestinal por su capacidad de
retención de agua, produce saciedad, retarda el vaciamiento
gástrico y también impide la absorción del colesterol en el
tubo digestivo.
El aporte energético es muy bajo por su escaso contenido
en macronutrientes energéticos (son los que aportan calorías a
la dieta, como las grasas y los hidratos de carbono asimilables,
principalmente). Por ello, las setas son útiles en las dietas de
adelgazamiento o hipocalóricas para tratamiento de la obesi-
dad y en la dieta habitual para evitar el riesgo de sobrepeso.
Tienen prácticamente todo tipo de micronutrietes esen-
ciales y una concentración signicativa o alta en sales mine-
rales como cationes de potasio, hierro, cobre, y cromo; así
como vitaminas A, D, B
2
, B
3
y B
5
.
En lo que se reere al catión sodio, es de destacar su
bajísimo aporte, por lo cual las setas son recomendables en
dietas hiposódicas destinadas a controlar la hipertensión ar-
terial (HTA) y la retención de líquidos (edemas).
Es de destacar la capacidad potencial antioxidante de las
setas relacionada con su potencial para disminuir los radica-
les libres.
Criterios para clasicar las setas como alimento:
Las setas son el cuerpo reproductivo de los hongos, organis-
mos que en la sistemática actual constituyen un reino (catego-
ría clasicatoria) aparte, pero como hemos visto anteriormente
podremos incluirlas, por su composición nutricional, junto con
otros alimentos vegetales o asimilarlas a los mismos.
Según su composición mayoritaria en macronutrientes
(proteínas, lípidos e hidratos de carbono), estaría entre los
alimentos proteicos y con buena calidad en aminoácidos.
Según su aporte energético con bajo contenido en calo-
rías, las setas deben incluirse entre los hipocalóricos.
Según la clasicación funcional de los alimentos en ener-
géticos, plásticos o estructurales y reguladores, las setas las
incluimos en la última categoría ya que sobre todo abundan
en su composición vitaminas y sales minerales.
Las setas tienen una apreciable variedad y densidad
(concentración de nutrientes por cada 1000 kcal) en ciertos
nutrientes y desde el punto de vista sensorial son muy apre-
ciadas, pero tendremos en cuenta las recomendaciones de los
expertos sobre su consumo por sus posibles efectos tóxicos
debido a la acumulación de metales pesados de ciertas espe-
cies silvestres y por ser indigestas en gran cantidad, por su
alto contenido en hidratos de carbono no asimilables.
Análisis y declaraciones nutricionales de las
propiedades saludables de las setas
El Reglamento (CE)1924/2006 del Parlamento Europeo
establece, de momento, en su anexo, un listado de declara-
ciones nutricionales que se podrán utilizar, así como cual-
quier otra que pueda tener el mismo signicado para el con-
sumidor, y sus condiciones de uso. Son las que se exponen
y valoran a continuación. Aún habrá que esperar hasta que
la Comisión establezca los perles especícos que deberán
Fuente, riqueza, cantidad signicatva
de un nutriente en un alimento
Por regla general, para decidir lo que constituye una
cantidad signicativa se considera un 15 % de la cantidad
recomendada especicada y suministrada por 100 g o 100
ml de alimento o por envase si éste contiene una única por-
ción. En función de la riqueza de un alimento en un nutriente
determinado se suele utilizar la siguiente clasicación para
diferenciar las fuentes de nutrientes: es una ‘buena fuente’
de un nutriente en particular si una porción aporta entre el
10 y el 19% del valor diario; posee un ‘alto contenido’ de
un nutriente determinado si aporta un 20 % o más del valor
diario; y posee un ‘bajo contenido’ de ese nutriente si aporta
un 5% o menos del valor diario.
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009)60
González Iglesias, C.
cumplir los alimentos o determinadas categorías de alimen-
tos para que puedan efectuarse declaraciones nutricionales o
de propiedades saludables, así como sus condiciones de uso.
En otros casos, como para la adición de otras declaraciones
no previstas en la lista, se establece un sistema de autoriza-
ción y listas especícas, como en el supuesto de declaracio-
nes de reducción del riesgo de enfermedad y declaraciones
relativas al desarrollo y la salud de los niños. De este modo,
la industria alimentaria cuenta con un referente legal sobre
las declaraciones que pueden efectuarse respecto a aquellos
alimentos, que además de nutrirnos, tienen un benecio es-
pecíco sobre la salud cientícamente demostrado.
El perl nutricional aplicado proviene de los valores bro-
matológicos medios obtenidos mediante las tablas de com-
posición de alimentos. En algunos casos la condición puede
cumplirse o no cumplirse dependiendo de la especie fúngica,
la cual debería ser evaluada individualmente. Alguna de las
declaraciones se reeren a alimentos enriquecidos, fortica-
dos y reducidos, los cuales están fuera de este trabajo.
A continuación se describen y valoran las llamadas de-
claraciones nutricionales o de contenido que arman, su-
gieren o dan a entender que un alimento posee propiedades
nutricionales benécas especícas, por razón de su aporte
energético (valor calórico) o por los nutrientes u otras sus-
tancias que contiene o no contiene (bajo en calorías, sal y
azúcar o rico en vitaminas, bra y proteínas).
Declaración nutricional y condiciones que se le
aplican a las setas
Bajo valor energético: cumple la condición
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
bajo valor energético, así como efectuarse cualquier otra
declaración que pueda tener el mismo signicado para el
consumidor, si el producto no contiene más de 40 kcal (170
kJ) por 100 g de alimento, en el caso de los sólidos. Las setas
proporcionan de media 29 (22–34) kcal por cada 100 g de
porción comestible.
Valor energético reducido: esto no es aplicable a setas
frescas silvestres o cultivadas.
Excepto si la empresa que comercializa el producto, rea-
liza alguna manipulación de las setas para disminuir su con-
tenido en micronutrientes.
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
valor energético reducido, así como efectuarse cualquier
otra declaración que pueda tener el mismo signicado para el
consumidor, si el valor energético se reduce, como mínimo,
en un 30 % con respecto al producto original; con una indi-
cación de la característica o características que provocan la
reducción del valor energético total del alimento.
Sin aporte energético: no cumplen la condición
Solamente podrá declararse que un alimento carece de
aporte energético, así como efectuarse cualquier otra decla-
ración que pueda tener el mismo signicado para el consu-
midor, si el producto no contiene más de 4 kcal (17 kJ)/100
ml. Para los edulcorantes de mesa se aplicará un límite de
0,4 kcal (1,7 kJ) por porción, con propiedades edulcorantes
equivalentes a 6 g de sacarosa (una cucharadita de sacarosa
aproximadamente).
Bajo contenido de grasa: cumple condición
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
bajo contenido de grasa, así como efectuarse cualquier otra
declaración que pueda tener el mismo signicado para el
consumidor, si el producto no contiene más de 3 g de grasa
por 100 g de alimento, en el caso de los sólidos. En cual-
quier caso la suma de ácidos grasos saturados y de áci-
dos grasos trans no deberá aportar más del 10% del valor
energético. Las setas tienen de media 0,7 (0,3-1,2) g de
grasas.
Sin grasa: no cumplen la condición
Solamente podrá declararse que un alimento no con-
tiene grasa, así como efectuarse cualquier otra declaración
que pueda tener el mismo signicado para el consumidor,
si el producto no contiene más de 0,5 g de grasa por 100 g
o 100 ml de alimento. No obstante, se prohibirán las decla-
raciones expresadas como «X % sin grasa». Para este caso,
dado que las setas contienen, la mayoría, de media un valor
superior a 0,73 no cumplen la condición; aunque alguna
especie estudiada sí lo cumple, al tener solamente 0,34 g
de grasa).
Bajo contenido en grasas saturadas: cumplen la condi-
ción
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
bajo contenido de grasas saturadas, así como efectuarse cual-
quier otra declaración que pueda tener el mismo signicado
para el consumidor, si la suma de ácidos grasos saturados
y de ácidos grasos trans en el producto no es superior a 1,5
g por 100 g para los productos sólidos. El contenido de las
setas es, de media, 0,13 g de grasas saturadas.
Sin grasas saturadas:
no cumplen la condición.
Solamente podrá declararse que un alimento no contiene
grasas saturadas, así como efectuarse cualquier otra declara-
ción que pueda tener el mismo signicado para el consumi-
dor, si la suma de grasas saturadas y de ácidos grasos trans
no es superior a 0,1 g por 100 g o 100 ml. La mayoría de las
setas contienen cifras superiores a la mencionada, aunque
alguna especie contiene sólo 0,05 g.
Bajo contenido en azúcares: cumplen la condición.
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
bajo contenido de azúcar, así como efectuarse cualquier otra
declaración que pueda tener el mismo signicado para el
consumidor, si el producto no contiene más de 5 g de azúcar
por 100 g en el caso de los sólidos. Las setas tienen de media
0,36 (0,1-0,6) g de azúcares.
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009) 61
Dietas y setas: declaraciones nutricionales y porpiedades saludables
Sin azucares: cumplen la condición
Solamente podrá declararse que un alimento no contiene
azúcar, así como efectuarse cualquier otra declaración que
pueda tener el mismo signicado para el consumidor, si el
producto no contiene más de 0,5 g de azúcar por 100 g o 100
ml. Los valores nutricionales para las setas oscilan entre 0,1-
0,6 g, por lo que alguna especie no la cumple.
Sin azucares añadidos: cumple la condición
Solamente podrá declararse que no se han añadido azúca-
res a un alimento, así como efectuarse cualquier otra declara-
ción que pueda tener el mismo signicado para el consumi-
dor, si no se ha añadido al producto ningún monosacárido ni
disacárido, ni ningún alimento utilizado por sus propiedades
edulcorantes. Si los azúcares están naturalmente presentes
en los alimentos, en el etiquetado deberá gurar asimismo la
indicación: «contiene azúcares naturalmente presentes».
Bajo contenido en sodio: cumple la condición.
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
bajo contenido de sodio/sal, así como efectuarse cualquier
otra declaración que pueda tener el mismo signicado para el
consumidor, si el producto no contiene más de 0,12 g de so-
dio, o el valor equivalente de sal, por 100 g o por 100 ml. Las
setas contienen de media 6,14 (3-8,8) mg de este mineral.
Muy bajo contenido en sodio: cumple la condición .
Solamente podrá declararse que un alimento posee un con-
tenido muy bajo de sodio/sal, así como efectuarse cualquier
otra declaración que pueda tener el mismo signicado para el
consumidor, si el producto no contiene más de 0,04 g de sodio,
o el valor equivalente de sal, por 100 g o por 100 ml.
Sin sodio o sin sal: no cumple la condición.
Solamente podrá declararse que un alimento no contiene
sodio o sal, así como efectuarse cualquier otra declaración
que pueda tener el mismo signicado para el consumidor, si
el producto no contiene más de 0,005 g de sodio, o el valor
equivalente de sal, por 100 g respecto al valor medio, pero
depende de la especie.
Fuente de bra:
cumple la condición
Solamente podrá declararse que un alimento es fuente de
bra, así como efectuarse cualquier otra declaración que pueda
tener el mismo signicado para el consumidor, si el producto
contiene como mínimo 3 g de bra por 100 g o, como mínimo,
1,5 g de bra por 100 kcal. Las setas tienen como media 3,26 g.
Alto contenido de bra: cumple la condición .
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
alto contenido de bra, así como efectuarse cualquier otra
declaración que pueda tener el mismo signicado para el
consumidor, si el producto contiene como mínimo 6 g de
bra por 100 g o 3 g de bra por 100 kcal. Es decir, si se
toman 100 g de setas no cumple la condición, pues de media
contienen 3,26 g de bra/100 g de setas, pero si tomas 300 g
de setas (que proporcionan aproximadamente 100 kcal) to-
maríamos 10 g de bra.
AMINOÁCIDOS
ESENCIALES
Clara de
huevo
% CDR
Verduras -
hortalizas
Media
verduras -
hortalizas
% CDR
Champiñón -
nísclao
% CDR
CDR
mg
Fenilalanina
656 107,44 1340 43,22 4,41 30,4 3,10 14 980
Histidina
242 34,57 751 24,22 3,46 22,8 3,25 10 700
Isoleucina
639 90,28 1557 50,22 7,17 44 6,28 10 700
Leucina
932 95,10 2187 70,54 7,19 48 4,89 14 980
Lisina
639 76,07 1895 61,12 7,27 68 8,09 12 840
Metionina
406 72,09 534 17,22 1,89 9,2 1,01 13 910
Treonina
501 102,24 1356 43,74 8,92 34,8 7,10 7 490
Triptófano
173 70,61 457 14,74 6,01 9,6 3,91 3,5 245
Valina
846 120,85 1926 62,12 8,87 36 5,14 10 700
Tabla 3. Composición en aminoácidos esenciales de dos setas (media entre champiñón cultivado y níscalo -columna 7 -) y su comparación con el grupo de
alimentos verduras-hortalizas (columna 4) y la clara de huevo que se toma como referencia (columna 2).
Nota: El aminoácido histidina es esencial, mayoritariamente en niños. Las columnas 3, 6 y 8 son los porcentajes que cubren 2, 5 y 7 sobre las CDR de ami-
noácidos para un adulto sano de 70 kg. (columna 10). La columna 9 son mg/kg de peso de aminoácidos como CDR.
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009)62
González Iglesias, C.
Fuente de proteínas : cumple la condición
Solamente podrá declararse que un alimento es fuente de
proteínas, así como efectuarse cualquier otra declaración que
pueda tener el mismo signicado para el consumidor, si las
proteínas aportan como mínimo el 12 % del valor energético
del alimento. En este caso aportan de media, el 51,56%.
Alto contenido de proteínas: cumple la condición
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
alto contenido de proteínas, así como efectuarse cualquier
otra declaración que pueda tener el mismo signicado para
el consumidor, si las proteínas aportan como mínimo el 20 %
del valor energético del alimento.
Fuente de vitaminas o de sales minerales: cumplen la
condición los descritos al nal de la declaración.
Solamente podrá declararse que un alimento es una fuen-
te de vitaminas o minerales, así como efectuarse cualquier
otra declaración que pueda tener el mismo signicado para
el consumidor, si el producto contiene como mínimo una
cantidad signicativa de vitaminas o minerales tal como se
dene en el anexo de la Directiva 90/496/CEE o una canti-
dad establecida por las excepciones concedidas en virtud del
artículo 7 del Reglamento (CE) nº 1925/2006 del Parlamento
Europeo y del Consejo, de 20 de diciembre de 2006, sobre la
adición de vitaminas, minerales y otras determinadas sustan-
cias a los alimentos (L 404/24 ES. Diario Ocial de la Unión
Europea: 30-12-2006).
Por regla general, para decidir lo que constituye una
cantidad signicativa se considera un 15 % de la cantidad
recomendada especicada en el anexo I del Reglamento an-
teriormente citado y suministrada por 100 g o 100 ml o por
envase, si este contiene una única porción.».
Cumplen la condición ( 15 %)
Minerales: potasio (18,5%), hierro (16,96%), cobre
(35,27%) y cromo ( 42,50%).
Vitaminas: A equivalente a retinol (13,5%), D (24,84%),
riboavina o B2 (18,60%) niacina o B3 (32,94%) y ácido
pantoténico o B 5 (47,50%).
Alto contenido de vitaminas o sales minerales
Solamente podrá declararse que un alimento posee un
alto contenido de vitaminas o minerales, así como efectuar-
se cualquier otra declaración que pueda tener el mismo sig-
nicado para el consumidor, si el producto contiene como
mínimo dos veces el valor de la «fuente de [nombre de las
vitamina] o [nombre del mineral]».
Cumplen la condición para:las vitaminas niacina o B3 y
ácido pantoténico o B5; así como para las sales minerales de
manganeso y cromo.
Contiene [nombre del nutriente u otra sustancia]
Solamente podrá declararse que un alimento contiene
un nutriente u otra sustancia, para los que no se establezcan
condiciones especícas en el presente Reglamento, así como
efectuarse cualquier otra declaración que pueda tener el mis-
mo signicado para el consumidor, si el producto cumple
todas las disposiciones aplicables previstas en el presente
Reglamento, y en particular el artículo 5. Por lo que respecta
a las vitaminas y minerales, se aplicarán las condiciones co-
rrespondientes a la declaración «fuente de». Por lo anterior-
mente expuesto cumplen la condición
Minerales: Potasio (18,5%), hierro (16,96%), cobre
(35,27%) y cromo( 42,50%).
Vitaminas: equivalente a retinol (13,5%), D (24,84%),
riboavina o B
2
(18,60%), niacina o B
3
( 32,94%) y ácido
pantoténico o B
5
(47,50%).
Macronutrientes: no cumplirían la condición, si po-
dremos decir, analizando el artículo 5 del Reglamento
1924/2006, que contiene proteínas, lípidos, ácidos grasos,
glúcidos y bra. Como regla general, se admite que un ali-
mento puede ser fuente de un determinado nutriente cuando
100 g, 100 ml, una porción o la dosis diaria recomendada
aportan como mínimo el 15% de las CDR. Respecto a la an-
terior armación, las setas no cumplirían la condición para
ningún macronutriene.
Mayor contenido de [nombre del nutriente]: no procede
(sí para alimentos enriquecidos o forticados)
Solamente podrá declararse que se ha incrementado el
contenido de uno o más nutrientes, distintos de vitaminas
o minerales, así como efectuarse cualquier otra declaración
que pueda tener el mismo signicado para el consumidor, si
el producto cumple las condiciones previstas para la declara-
ción «fuente de» y el incremento de su contenido es de, como
mínimo, el 30 % en comparación con un producto similar.
Contenido reducido de [nombre del nutriente]: esto no es
aplicable a setas silvestres o cultivadas.
Ya comentado en valor energético reducido, solamente
si la empresa reduce el contenido de las setas articialmente,
algo que no se realiza con las setas.
Solamente podrá declararse que se ha reducido el conte-
nido de uno o más nutrientes, así como efectuarse cualquier
otra declaración que pueda tener el mismo signicado para
el consumidor, si la reducción del contenido es de, como
mínimo, el 30 % en comparación con un producto similar,
excepto para micronutrientes, en los que será admisible una
diferencia del 10 % en los valores de referencia establecidos
en la Directiva 90/496/CEE del Consejo, así como para el so-
dio, o el valor equivalente para la sal, en que será admisible
una diferencia del 25 %.
Light/lite (ligero): esto no es aplicable a setas frescas.
Las declaraciones en las que se arme que un producto
es «light» o «lite» (ligero), y cualquier otra declaración que
pueda tener el mismo signicado para el consumidor, debe-
rán cumplir las mismas condiciones que las establecidas para
el término «contenido reducido»; asimismo, la declaración
deberá estar acompañada por una indicación de la caracterís-
tica o características que hacen que el alimento sea «light» o
«lite» (ligero).
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009) 63
Dietas y setas: declaraciones nutricionales y porpiedades saludables
Naturalmente/natural: cumple condición.
Cuando un alimento reúna de forma natural la condición
o las condiciones establecidas en el anexo mencionado para
el uso de una declaración nutricional, podrá utilizarse el tér-
mino «naturalmente/natural» antepuesto a la declaración.
Por lo tanto, se podrá utilizar el concepto natural si cumple
algunas de las condiciones del anexo.
A juzgar por los datos obtenidos se puede armar que
las setas, según su perl nutricional medio, son un alimento
saludable ya que cumplen una buena parte de las disposi-
ciones relativas a las declaraciones nutricionales. Por lo
tanto, una marca registrada o una designación arbitraria que
aparezca en el etiquetado, la presentación o la publicidad de
este alimento y que pueda interpretarse como una declara-
ción nutricional o de propiedades saludables podrá utilizarse
sin someterse a los procedimientos de autorización previs-
tos en el Reglamento, siempre que esté acompañada por una
declaración nutricional o de propiedades saludables en el
etiquetado, la presentación o la publicidad que cumpla las
disposiciones del Reglamento 1924/2006 y modicaciones
posteriores.
Podrán utilizarse las declaraciones que si se ajustan al
Reglamento, pero no deberán:
Ser falsas, ambiguas o engañosas; dar lugar a dudas so-
bre la seguridad y/o la adecuación nutricional de otros ali-
mentos; alentar o aprobar el consumo excesivo de un alimen-
to; armar, sugerir o dar a entender que una dieta equilibrada
y variada no puede proporcionar cantidades adecuadas de
Concepto y valores nutricionales
medios de las setas
Declaración nutricional y condiciones de aplicación
Bajo contenido Contenido reducido Sin
Valor energético
29 kcal de media
≤ 40 kcal/100 g
Al menos inferior al 30% de
la original
< 4 kcal / 100 ml
Bajo contenido Sin
Grasa
0.73 g
≤ 3 g/100 g <0.5 g/100 g ml
Grasa saturada
0.13 g
≤ 1.5 g/100 y no más de
10% de la energía
≤ 0.1 g/100 g
Azúcares 0.36
(0.1-0.6)
5g/100g <0.5 g/100g
Bajo contenido Muy bajo contenido Sin
Sodio/sal
6.14 mg Na
≤ 0.12 g de sodio/100g o
su equivalente en sal
≤ 0.04 g de sodio/100 g o
su equivalente en sal
≤ 0.005 g de sodio/100 g
o 100 ml, o su equivalente
en sal
Fuente de Alto contenido
Fibra 3.26 g
≥3g/100g o ≥1.5g/100
kcal
≥6 g/100 g o ≥ 3 g/100 kcal
Proteínas
3.74 g el 51.56% de energía
≥ 12% del total de energía ≥ 20 % del total de energía
Contiene Mayor contenido Contenido reducido
Nutrientes
Solo cuando cumple las
disposiciones del Regl.
Particularmente el art. 5
Vitaminas y minerales =
“fuente de” K, Fe, Cu, Cr--
-A,D,B
2
,B
3
,B
5
“Fuente de” + ≥ 30% de
producto similar
Reducción ≥ 30%comparado
con producto similar.
Ligh/lite Ligero
Energías nutrientes
Si reúne las condiciones de declaración “reducido”, debe acompañarse de una indicación
de las características que hacen que el alimento sea Light o Lite ( ligero)
Naturalmente/natural
Cuando el alimento reúne de forma natural la condición o condiciones del anexo para el
uso de una declaración nutricional
Tabla 4. Declaraciones nutricionales de las setas.
Códigos para identicar el cumplimineto de la condición
Cumplen la condición No cumplen la condición No procede: no aplicable a setas frescas o cultivadas.
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009)64
González Iglesias, C.
nutrientes en general, ni referirse a cambios en las funcio-
nes corporales que pudieran crear alarma en el consumidor o
explotar su miedo.
Aunque según el trabajo, el perl nutricional medio de
las setas cumple la mayoría de las condiciones, cada especie
debe pasar por un examen individual sobre la declaración o
declaraciones que pretenda utilizar el comercializador. Si se
quieren realizar declaraciones o alegaciones de propiedades
saludables o de reducción de riesgo de enfermedad, nece-
sitan pasar por unos trámites de autorización de la Agencia
Española de Seguridad Alimentaria y Nutrición (AESAN) y
la Autoridad Europea de Seguridad Alimentaria (EFSA). Por
lo visto, solamente un pequeñísimo porcentaje de empresas
alimentarias son autorizadas para realizar alguna declaración
o alegación saludable en los mensajes que quieren presentar
en los envases, etiquetado y campañas de publicidad, puesto
que no cumplen con las características mencionadas en las
normativas anteriormente expuestas.
Una alimentación es saludable cuando sirve para conser-
var o restablecer la salud corporal o favorece el buen estado
de salud disminuyendo el riesgo de enfermedades crónicas
relacionadas con ella. Las setas contribuyen, como alimento
saludable, a la consecución del patrón alimentario medite-
rráneo (excelente estado nutricional, sensación placentera) y,
en consecuencia, favorecedor de la salud. La Organización
Mundial de la Salud (OMS) ha identicado diez factores de
riesgo como claves en las enfermedades crónicas, y entre
ellos están: el sedetarismo, la obesidad, la hipertensión ar-
terial, la hipercolesterolemia y el consumo insuciente de
frutas y verduras. Nuestras amigas las setas tienen mucho
que decir en este aspecto al estar incluidas, como se demos-
tró anteriormente según su composición nutricional, en el
TABLA DE COMPOSICION DE ALIMENTOS
Pérdidas según el tipo de cocción (%)
Nombre de los
alimentos Tipo de cocción
Vitaminas
Fuente
Minerales
Vit. C
Vit. B
1
(tiamina)
Vit. B
2
(riboavina)
Niaciina
Vit. B
6
(piridoxina)
Vit. A
(retinol)
Vit. E
(α -tocoferol)
Ac. fólico
Vit. B
12
(cianocobalamina)
LACTEOS
Hervido 19 5 50 0 10 0 10 10 20 20 5
Fritura 19 0 50 0 10 0 10 10 20 20 5
Horneado 19 0 50 0 10 0 10 10 20 20 5
CEREALES
Hervido 19 5 0 15 10 10 40 10 0 50 0
Fritura 19 0 0 20 5 5 40 10 0 50 0
Horneado 19 0 0 20 5 5 25 10 0 50 0
VERDURAS Y FRUTAS
Hervido 19 5 50 25 35 35 40 10 0 40 0
Fritura 19 0 50 25 35 35 40 10 0 40 0
Horneado 19 0 50 25 35 35 40 10 0 40 0
CARNES
Hervido 19 5 20 60 30 50 50 10 20 30 20
Fritura 19 0 20 20 20 20 20 20 20 30 20
Horneado 19 0 20 20 20 20 20 5 20 30 20
PESCADOS
Hervido 19 5 20 20 10 15 5 10 0 10 5
Fritura 19 0 20 20 20 20 20 20 0 10 0
Horneado 19 0 20 30 20 20 10 20 0 20 10
HUEVOS
Hervido 19 5 0 10 5 0 10 5 0 10 0
Fritura 19 0 0 15 10 0 20 20 0 20 0
Tabla 5. Pérdidas de nutientes según el tipo de tratamiento con calor en diferentes grupos de alimentos.
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009) 65
Dietas y setas: declaraciones nutricionales y porpiedades saludables
grupo de alimentos verduras-hortalizas y estar directamente
relacionadas con las patologías anteriormente mencionadas.
También inuyen sobre el sedentarismo, siendo una escusa
perfecta la actividad micológica paseando por nuestros cam-
pos y montes, contribuyendo a paliar el mismo (se recomien-
da un mínimo diario de 30 minutos de actividad física) y a
regular una media de actividad física semanal aceptable.
Los resultados presentados se han establecido tomando
como referencia a un adulto de edad y peso medio. Para al-
gunos nutrientes las cantidades a comparar son sensiblemen-
te diferentes en función de la edad y sexo. De no llevar a
cabo las pautas de una dieta equilibrada de nada sirve, ais-
ladamente, cualquier alimento por muy saludable que sea.
Además, ya que una ración excesiva es indigesta, y algunas
especies acumulan metales pesados en concentración impor-
tante, no parece recomendable su consumo frecuente ni en
grandes cantidades. Respetemos las pautas de una alimenta-
ción equilibrada, consumiendo setas de forma moderada, y
nos proporcionarán benecios para la salud. Las setas tienen
una composición nutricional similar a otros vegetales (plan-
tas del grupo verduras-hortalizas), y la ingesta recomendadas
para estos, como ración, es de 2 al día.
Una cuestión importante a tener en cuenta son los facto-
res que condicionan el valor nutritivo de los alimentos. Estos
tienen una valor nutritivo potencial en el momento de ser
recolectado y otro real, ya que sufre transformaciones por
diferentes procesos hasta ser metabolizado en nuestro orga-
nismo. Según el tipo de preparación a que se sometan pueden
perder gran cantidad de vitaminas y minerales pero no de
macronutrientes.
Podemos armar que las setas no son medicamentos, y
como la mayoría de los alimentos son mezclas complejas de
nutrientes en calidad y cantidad. Ya que no hay ningún ali-
mento completo (el que más se acerca es la leche) para el
hombre adulto, los nutrientes se encuentran amplia y hete-
rogéneamente distribuidos en los alimentos y pueden obte-
nerse a partir de múltiples combinaciones de los mismos. Se
dice que existe una única forma de nutrirse pero múltiples
formas de combinar los alimentos y alimentarse.
Deseo terminar con una serie de dichos alimentarios que
encierran, cada uno de ellos, una gran verdad:
“No hay una dieta ideal, ni ningún alimento aislado es
bueno o malo por sí mismo”
“Tan importante es lo que se come, como lo que se deja
de comer”
“La variedad en la dieta es la mayor garantía de equi-
librio nutricional”.
TABLA DE COMPOSICION DE ALIMENTOS
Pérdidas según el tipo de cocción (%)
Nombre de los
alimentos Tipo de cocción
Vitaminas
Fuente
Minerales
Vit. C
Vit. B
1
(tiamina)
Vit. B
2
(riboavina)
Niaciina
Vit. B
6
(piridoxina)
Vit. A
(retinol)
Vit. E
(α -tocoferol)
Ac. fólico
Vit. B
12
(cianocobalamina)
LACTEOS
Hervido 19 5 50 0 10 0 10 10 20 20 5
Fritura 19 0 50 0 10 0 10 10 20 20 5
Horneado 19 0 50 0 10 0 10 10 20 20 5
CEREALES
Hervido 19 5 0 15 10 10 40 10 0 50 0
Fritura 19 0 0 20 5 5 40 10 0 50 0
Horneado 19 0 0 20 5 5 25 10 0 50 0
VERDURAS Y FRUTAS
Hervido 19 5 50 25 35 35 40 10 0 40 0
Fritura 19 0 50 25 35 35 40 10 0 40 0
Horneado 19 0 50 25 35 35 40 10 0 40 0
CARNES
Hervido 19 5 20 60 30 50 50 10 20 30 20
Fritura 19 0 20 20 20 20 20 20 20 30 20
Horneado 19 0 20 20 20 20 20 5 20 30 20
PESCADOS
Hervido 19 5 20 20 10 15 5 10 0 10 5
Fritura 19 0 20 20 20 20 20 20 0 10 0
Horneado 19 0 20 30 20 20 10 20 0 20 10
HUEVOS
Hervido 19 5 0 10 5 0 10 5 0 10 0
Fritura 19 0 0 15 10 0 20 20 0 20 0
Fig. 1. Pleurotus ostreatus (Jacq.) P. Kumm. Foto: José Ignacio Gómez Risueño
Bol. Micol. Lazarillo, 3: 55-66 (2009)66
González Iglesias, C.
Referencias
CARBAJAL AZCONA, A. (2008). ABC de la Nutrición. Web
Site: http://www.kelloggs.es/nutrición.php.
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(2003) La dieta equilibrada prudente o saludable. Comunidad de
Madrid. Madrid.
CERVERA, P.(2004) Tablas de composición de alimentos
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GÓMEZ CANDELA, C. (2007) Guía visual de alimentos y
raciones. Editores Médicos S.A. Madrid
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MATAIX VERDÚ, J. ( 2005). Nutrición para educadores. (2ª
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ORTEGA ANTA, R. M. ( 2004) La composición de los alimen-
tos ( tabla de composición de alimentos). Editorial Complutense.
Madrid
Legislación
Directiva 2008/100/CE de la comisión de 28 de octubre
de 2008. Cantidades diarias recomendadas, los factores de
conversión de la energía y las deniciones.
Reglamento (CE) nº 1924/2006 (última modicación y
corrección de errores 2007) del Parlamento Europeo y del
Consejo relativo a las declaraciones nutricionales y de pro-
piedades saludables en los alimentos.
Reglamento (CE) Nº 353/2008 de la Comisión por el que
se establecen normas de desarrollo para las solicitudes de
autorización de declaraciones de propiedades saludables con
arreglo al artículo 15 del Reglamento 1924/2006.
Directiva 1990/496/CEE que regula el etiquetado sobre
propiedades nutritivas de los alimentos.
Directiva 2000/13/CE que regula el etiquetado presenta-
ción y publicidad de los productos alimenticios.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009) 67
E
l término micorrizas (procedente del término griego:
mykos: hongo; y del vocablo latino rhiza: raíz, éste
proviene asimismo del vocablo griego rhizós: raíz),
fue empleado por primera vez por Frank en 1885; pero no
es hasta mediados del siglo XX cuando se empieza a dar la
importancia y el signicado que se merecen a estas asocia-
ciones; observando su presencia en la casi totalidad de los
sistemas suelo-planta (BAREA & JEFFRIES, 1995). La aso-
ciación micorrícica es una simbiosis mutualista entre la plan-
ta y el hongo, en la que la energía se mueve primariamente
de la planta al hongo, y los recursos inorgánicos se mueven
desde el hongo a la planta (ALLEN, 1991).
Micorrizas: palabra mágica que todos conocemos, aun-
que ¿hasta qué punto? Solemos aplicarla como si se tratase
de un elixir, un ungüento mágico o, tal vez, el mismísimo
“bálsamo de Fierabrás” que, en vez de curar heridas, hiciera
crecer las plantas. Pero, por encima de estos prodigios, algo
hará que las plantas micorrizadas sean
más altas y lozanas que las que no en-
contraron pareja para formar la sim-
biosis. Simbiosis, pareja, ungüento...
Dejemos de andarnos por las ramas y
bajemos a las raíces a observar.
En el suelo, a nivel de la rizosfera,
podemos encontrar gran cantidad de
organismos, en mayor densidad que en
la supercie del suelo. Bajo este am-
paro radical, innidad de especies tan-
to macro como microscópicas (bacte-
rias, hongos, nematodos, insectos, ácaros…) nacen, crecen, se
reproducen y mueren, cumpliendo así las leyes más esenciales
de la vida. La mayor parte de las especies fúngicas se distribu-
ye en los primeros horizontes así como en la rizosfera de las
plantas. Entre la micobiota edáca del suelo se encuentran es-
pecies saprobias y simbiontes; la actividad de cada una de ellas
tiene importantes consecuencias en el funcionamiento, estruc-
tura y equilibrio de los ecosistemas. La mayoría de los hongos
del suelo son saprótos que, junto con las bacterias, participan
en la descomposición de la materia orgánica a la vez que re-
ciclan elementos muy importantes para el crecimiento de las
plantas. Si nos jamos en las diferentes asociaciones de las
especies de hongos simbiontes que forman micorrizas, vemos
que éstos cumplen un papel muy importante en el desarrollo y
crecimiento de las plantas hospedantes.
Lo primero que hemos de hacer es denir estas asocia-
ciones simbióticas. Se denomina “micorriza” al órgano mixto
resultante de la asociación simbiótica entre las raíces de las
plantas y determinados hongos del suelo (AZCÓN-AGUI-
LAR & BAREA, 1980).
DE BARY (1887), citado por ALLEN (1991), nos des-
cribe diferentes tipos de interacciones entre organismos re-
uniendo términos como parasitis-
mo, comensalismo, amensalismo,
neutralismo y mutualismo; depen-
diendo de que la relación entre és-
tos sea negativa, positiva o neutra.
Este tipo de simbiosis micorrícicas
han sido denidas como mutualis-
mo, porque la gran mayoría de los
estudios han demostrado que am-
bos simbiontes se benecian del
intercambio recíproco de nutrien-
tes. Sin embargo, no siempre ocu-
rre así, ya que, a veces, la respuesta de las plantas en alguna
fase de la micorrización oscila con conductas tanto positivas
como negativas y neutras .
En las zonas próximas a la rizosfera, se producen diversas
conductas de estas asociaciones simbióticas con los micro-
Las micorrizas producen en las
plantas numerosos benecios,
favoreciendo su desarrollo y
mejorando su resitencia frente a
organismos patógenos
HONGOS SIMBIONTES: MICORRIZAS
Gerardo J. García Cuesta
C/ Pedro Mendoza, 1-5. 1º C. 37004. Salamanca
E-mail: geraldino2007@terra.es
re s u m e n : Este trabajo pretende dar a conocer las asociaciones micorrícicas, de una manera sencilla, a todas
aquellas personas que estén interesadas en el estudio de estos procesos simbióticos, profundizando en sus di-
ferentes tipos y en su siología. Las micorrizas actúan como un factor muy importante en el crecimiento de las
plantas; pudiéndose apreciar sus efectos tanto en los lugares en los que los factores de crecimiento se hallan
por debajo de lo normal para el desarrollo de las plantas, como en áreas devastadas, con exceso de viento,
suelos pobres o con alto contenido de sales, así como en los cultivos con buenas condiciones; obteniéndose
unos resultados muy positivos en ambos casos, al desarrollar las plantas gran tolerancia frente a muchos fac-
tores de estrés, a la vez que una mayor resistencia frente a organismos patógenos y una mejor asimilación
de los nutrientes.
pa l a b r a s C l a v e : Raíz, hongo, simbiosis, micorrizas, transferencia de nutrientes.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009)68
García Cuesta, G.
organismos del suelo bien estimulando y potenciando a las
bacterias jadoras de nitrógeno: acción de gran importancia
y trascendencia para la planta, como para especies de Fran-
kia, Rhizobium y de Cianobacterias; o bien, por el contrario,
luchando en competencia por los nutrientes o defendiéndose
contra la fauna patógena. Metabólicamente, las micorrizas
son consideradas la parte más activa de los órganos de ab-
sorción de nutrientes de las plantas (BAREA & HONRU-
BIA, 1993). Sabemos que la planta aporta al hongo azúcares
y otros productos derivados de la fotosíntesis, a la vez que el
hongo contribuye a la mejora de la nutrición de la planta, lo
que permite, a través del micelio, un aumento en la absorción
de agua y de nutrientes a la planta, y favorece la resistencia
de las plantas en zonas con estrés hídrico y nutricional.
El fósforo y el nitrógeno también son absorbidos en ma-
yor medida si existe simbiosis micorrícica, de forma que la
planta tiene así acceso a recursos nutricionales muy impor-
tantes para su desarrollo. Además, algunos tipos de simbiosis
permiten amortiguar la toxicidad debida a metales pesados
como (Al, Cd, Cu, Mb, Ni, Zn) (SMITH & READ, 1997).
Igualmente, las micorrizas protegen a la planta frente a estrés
de tipo biótico (patógenos del suelo) y abióticos (salinidad,
sequía, metales pesados) (AZCÓN-AGUILAR et al., 2002).
Germinación de las esporas y su infección mi-
corrícica.
La primera fase del ciclo de los hongos micorrícicos se
inicia con la germinación de sus esporas que formarán un
gran número de núcleos y de glóbulos lipídicos (BÉCARD
& PFEFFER, 1993). Este proceso necesita unas condiciones
adecuadas de humedad y temperatura, y es independiente de
la existencia o no de la planta hospedadora. A continuación, se
forman uno o varios tubos de germinación que pueden proli-
ferar y formar un micelio, el cual se extiende de forma radial y
errática a través del suelo en busca de una planta hospedado-
ra susceptible de ser colonizada. Existen estudios que avalan
que la formación de los tubos de germinación va acompañada
de una activación del metabolismo de la espora, provocando
cambios en la estructura nuclear y en la replicación del ADN.
Como consecuencia de dicha replicación, el número de nú-
cleos aumenta en gran cantidad. En cuanto a aspectos meta-
bólicos, en los primeros días de su desarrollo, el tubo de ger-
minación consume trehalosa (BECÁRD et al., 1991), pasando
posteriormente a consumir triglicéridos (BEILBY, 1980).
Si las hifas del nuevo hongo no encuentran raíces de una
planta apta de ser colonizada, se produce un micelio muy
reducido, manteniendo el crecimiento tan sólo unos cuantos
días tras la producción del tubo de germinación y, transcurri-
do este tiempo, el citoplasma de las hifas nacientes se retrae
hacia la espora, entrando ésta de nuevo en reposo (BAGO et
al., 1999). Antes de degenerar denitivamente, una espora
tiene la capacidad de poder iniciar este proceso de germi-
nación en repetidas ocasiones. HARRISON (2005) asegura
que hay bastantes evidencias que ponen de maniesto que
Fig. 1. Micorrizas.
(Posted by anuki @2007 para la asociación agroecológica Alcapared)
Fig. 2. Colonización de una raíz de abeto con ectomicorrizas.
A. Vista general. B. Raíz lateral aislada.
Según H. Ziegler. Fuente: Sitte & al. (35
a
Ed.). Strarburger. Tra-
tado de Botánica
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009) 69
Hongos simbiontes: micorrizas
los hongos micorrícicos reciben señales de las plantas hos-
pedadoras antes del establecimiento de la simbiosis y que, a
su vez, dichas plantas también perciben señales del hongo
micorrícico. Una vez que el hongo encuentra una raíz sus-
ceptible de ser colonizada, aumenta la ramicación de su
micelio, acrecentando así sus posibilidades de contacto con
la raíz (GIOVANNETTI et al., 1993). Si realiza la operación
con éxito, se adhiere a la raíz y forma un apresorio sobre su
epidermis; dos o tres días después, se iniciará la penetración
del hongo en la raíz de la planta. Tras la penetración de las
hifas en las raíces secundarias, el hongo cambia su anato-
mía para formar la micorriza. En este proceso, el hongo sólo
invade la epidermis y el córtex de la raíz, mientras que los
meristemos o tejidos vasculares son resistentes a la infección
por el hongo (BONFANTE & PEROTTO, 1995).
La mayoría de las plantas que viven en la supercie te-
rrestre presentan estas simbiosis (BAREA, 1991). Por esto es
por lo que podemos armar que las micorrizas son uno de los
tipos de simbiosis más abundantes en la biosfera, presentes
en el 95 % de las plantas terrestres. De acuerdo con su mor-
fología y siología se distinguen siete tipos, entre los cuales
las formas arbusculares o endomicorrizas son las más amplia-
mente distribuidas; por lo tanto, las de mayor impacto en la-
naturaleza y en la agricultura (HARLEY & SMITH, 1983).
La relación hongo-planta ha sido objeto de intensos es-
tudios, especialmente en las últimas dos décadas, con lo que
se ha podido determinar que las micorrizas son una parte in-
tegral de la planta, con un importante papel en el crecimiento
y desarrollo del vegetal; incluso se ha llegado a cuanticar la
presencia y grado de micorrización alcanzado por las plán-
tulas, según la metodología descrita por PHILLIPS & HAY-
MAN (1970). Mediante fórmula matemática, nos exponen
cómo determinar la DM (dependencia de las plántulas a la
micorrización). Pero, sin lugar a dudas, son de máxima im-
portancia los estudios realizados sobre el desarrollo y estruc-
tura en relación con el transporte y transferencia de nutrien-
tes y las repercusiones en ambos simbiontes.
Tipos de micorrizas.
Atendiendo a las diferencias morfológicas y siológicas
que presentan en su estado maduro, se distinguen siete tipos
distintos de micorrizas: vesículo arbusculares (VAM), arbu-
toides, monotropoides, ericoides, orquidioides, ectendomi-
corrizas y ectomicorrizas. MARSCHNER & DELL (1994)
Fig. 3. Tipos de micorrizas y simbiontes implicados en su formación. Se representa en azul el desarrollo del micelio en cada tipo de micorriza.
LEYENDA: M= manto, H= red de Hartig, P= agregados de hifas o “pelotones”, C= ovillos o “coils”, A= arbúsculos, V=vesículas.
Modicación de esquema cedido por Dr. Barea.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009)70
García Cuesta, G.
nos indican la importancia de diferenciar entre las ectomico-
rrizas, ectendomicorrizas y endomicorrizas.
Ectomicorrizas
Se caracterizan por la presencia de tres componentes es-
tructurales: manto (que envuelve la raíz), red de Hartig y sis-
tema hifal externo al manto. Presentan hifas septadas (tabi-
cadas) que colonizan la raíz únicamente a nivel intercelular.
Se establecen cuando el micelio fúngico penetra entre
las células corticales formando la red de Hartig y organizan
una envoltura de las raíces afectadas, denominada manto o
vaina, de 20 a 100 micras de espesor, de la cual emana el
sistema hifal que proporciona mayor supercie de absorción
de compuestos minerales.
Parece ser que los fosfatos absorbidos son transportados
más lentamente a las plantas micorrizadas, por lo que se ha
pensado que debe producirse una acumulación en los mantos
antes de ser transferidos al antrión.
Desde el manto, las hifas crecen tanto hacia fuera por
el suelo formando el sistema hifal externo, como hacia den-
tro penetrando entre las células del córtex de la raíz a nivel
intercelular, dando lugar a una estructura característica de-
nominada red de Hartig. En esta zona, el micelio deja de
estar tabicado (es cenocítico), favoreciendo así los procesos
simbióticos de intercambio de nutrientes y agua entre el hon-
go y la planta (PERA, 1992). El hongo recibe de la planta
los compuestos carbonados y sustancias especícas de creci-
miento, como la tiamina (vitamina B1).
Las ectomicorrizas son muy sensibles a factores ambien-
tales y sólo se producen en raíces secundarias, cortas y de
crecimiento limitado.
Pueden ser muy variadas en sus ramicaciones (simples,
dicotómicas, pinnadas, mazudas, coracoides, piramidales),
presentando diferentes colores y formas. El manto puede ser
liso, reticulado, lanoso, algodonoso, verrucoso, espinulado,
broso, etc. A veces se forman agregados de hifas denomi-
nados rizomorfos, que crecen en paralelo desde que dejan
el manto y forman una estructura lineal. ETAYO & DE MI-
GUEL (1998) nos conrman que desde el manto salen hifas
o rizomorfos hacia el sustrato en forma radial. Otras veces
surgen como elementos simples desde la vaina las llamadas
hifas emanantes, creciendo individualmente. Finalmente,
hacia el exterior del manto se extienden hifas, más o menos
largas, que reciben el nombre de espínulas, su forma y tama-
ño varía con las diferentes especies de hongos y junto con el
manto, es clave para determinar a qué especies corresponden
(REYNA, 2000).
Las ectomicorrizas tienen lugar entre hongos de la clase
Basidiomycetes o Ascomycetes (ocasionalmente Zygomyce-
tes) y plantas de los grupos Gimnospermas o Angiospermas;
no son muy frecuentes, pues solamente establecen este tipo
de simbiosis entre un 3% y un 5% de las plantas. No obs-
tante, tienen gran importancia, porque lo hacen las plantas
con interés forestal como robles, pinos, abedules, encinas,
tilos, nogales, sauces, etc. Entre los hongos, muchos de ellos
son muy apreciados por su interés gastronómico como Tuber
Fig. 4. A. Basidiomas de Amanita muscaria.
Fuente:
Nilsson & al. (2005). BMC Bioinformatics.
Fig. 5. Manto producido por Cenoccocum geophylum en raíces de en-
cina (Quercus ilex). Foto: S. Sánchez Durán.
Fig. 4. B. Ectomicorriza de Amanita muscaria.
Fuente:
Nilsson & al. (2005). BMC Bioinformatics.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009) 71
Hongos simbiontes: micorrizas
spp., Boletus spp., Lactarius spp., Amanita spp., Canthare-
llus spp., Russula spp., Morchella spp., etc. Los hongos que
forman las ectomicorrizas son, principalmente, basidiomice-
tos (cerca de 5.000 especies) y unos pocos ascomicetos.
Endomicorrizas
Se caracterizan por la presencia de hifas intra e intercelu-
lares; las intracelulares forman arbúsculos en el interior de las
células corticales, mientras que ambos tipos de hifas pueden
producir vesículas, ubicadas en el interior de estas células o
entre ellas. Su sistema hifal no forma manto. Este grupo, a
su vez, se subdivide en: ericoides, orquidiodes y vesículo-
arbusculares (VAM) (ETAYO & DE MIGUEL,1998).
Micorrizas Vesículo-Arbusculares (VAM): Se estable-
cen cuando el hongo se adhiere a la raíz y forma un apresorio
sobre la epidermis de la misma, formándose así la estructura
de precolonización a partir de la cual, dos o tres días después,
se iniciará la penetración del hongo en la raíz de la planta
(GIOVANNETTI et al., 1993). Los sitios más habituales de
penetración coinciden con los lugares más activos de la raíz,
posiblemente porque la exudación radical es más abundante
en estas zonas. El hongo micorrícico no penetra en el interior
de las células del córtex de la raíz por heridas ni coloniza
raíces muertas. Esta acción sólo es apreciable mediante la
observación de secciones de la misma al microscopio (REY-
NA, 2000). Los apresorios que forman los hongos micorrí-
cicos arbusculares son simples, estructuras no melanizadas
(las melaninas son pigmentos oscuros que protegen los orga-
nismos contra el estrés ambiental).
Según HARRISON (1997), la micorriza arbuscular se
caracteriza porque coloniza las células corticales de raíces
de las plantas y forma estructuras intracelulares llamadas
arbúsculos. Estos se desarrollan dentro de las células infec-
tadas, por ramicación dicotómica repetida de la hifa inva-
sora. Tienen vida corta y se desintegran en el suelo cuando
muere la raíz. ALEXANDER et al., (1988) nos indican que
la vida media de los arbúsculos es de aproximadamente siete
días; si bien, transcurridos los mismos, degeneran, mientras
que la célula cortical recupera su morfología previa a la co-
lonización e, incluso, puede ser colonizada de nuevo. Este
colapso arbuscular podría estar inducido como un rechazo
de la planta al considerar al arbúsculo como una estructura
extraña (GARCÍA-GARRIDO & OCAMPO, 2002). De he-
cho, distintos estudios han puesto de maniesto la existen-
cia de genes implicados en respuestas de defensa en células
colonizadas por arbúsculos (BLEE & ANDERSON, 1996).
Estas respuestas se van reprimiendo durante el desarrollo de
la simbiosis (DAVID et al., 1998).
Algunas especies de estos hongos desarrollan otras es-
tructuras en el interior de la raíz infectada, llamadas vesí-
culas, que contienen sustancias de reserva de los hongos
(lípidos).
Las vesículas se ubican tanto en el interior de las células
corticales como entre ellas, y se forman a partir del hincha-
Fig. 6. Esquema de una ectomicorriza y de una endomicorriza. Fuente: Cambell & Reece (2007).
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009)72
García Cuesta, G.
miento de una hifa, generalmente terminal, y pueden llegar a
engrosar sus paredes y convertirse en esporas (principalmen-
te en el género Glomus).
Esta transformación de vesículas en esporas podría estar
ligada a situaciones de estrés para la micorriza o a la muerte
inminente de la planta.
Las esporas que tienen altos contenidos de lípidos (cerca
del 45% de su peso seco), junto con las hifas, producen to-
hormonas u hormonas vegetales como la auxina, giberelina
y citoquininas. Si estas hormonas son secretadas durante la
formación de la micorriza van a contribuir signicativamen-
te a los cambios en la siología del hospedante. La auxina
tiene la importante propiedad de estimular la actividad de la
encima ATPasa (subconjunto de enzimas que son capaces de
producir la hidrólisis del ATP en ADP y un ión fosfato -Pi-,
liberando energía).
Los hongos implicados en la formación de estas mi-
corrizas son simbiontes obligados (necesitan permanecer
asociados para vivir), no forman vaina, el micelio externo
es escaso y no tienen las hifas tabicadas (hifas no septadas)
(SCHÜΒLER et al., 2001), no tienen fase de reproducción
sexual o, al menos, no se conoce aún, pero sí son capaces
de formar esporas de resistencia sobre hifas vegetativas.
Estas esporas son multinucleadas y el número de núcleos
es muy variable, dependiendo del hongo en cuestión, en-
contramos esporas con 72 núcleos en el caso de Scutellos-
pora castanea, y otras con hasta 2600 en el caso de espe-
cies del género Gigaspora (COOKE et al., 1987; BÉCARD
& PFEFFER, 1993).
La estructura de la micorriza arbuscular (VAM) repre-
senta uno de los órganos absorbentes del subsuelo de la ma-
yoría de las plantas en la naturaleza (HARRISON, 1997). Se
estima que se desarrolla en el 80-85% de las plantas terres-
tres (SMITH & READ, 1997), fructicando en más de 200
familias y superando 1000 géneros de plantas, distribuidas
entre los grupos de las Briótas, Pteridótas, Angiospermas
y Gimnospermas, dentro de las cuales se incluyen muchas
especies de cultivos importantes en la agricultura (DANIELL
et al., 2001), principalmente en gramíneas y leguminosas.
Respecto a la taxonomía de hongos formadores de VAM,
se conocen más de 130 especies, que pertenecen al phyllum
Zygomycota, las cuales están ubicadas en el orden Glomales,
en dos subórdenes, tres familias y seis géneros (MORTON
& BENNY, 1990), pero distribuidas en su mayor parte en el
género Glomus (SCHÜΒLER et al., 2001).
Micorrizas de ericales: Esta simbiosis se produce en
plantas del orden Ericales, siendo los micobiontes especies
de los grupos Basidiomycetes y Ascomycetes .
Los hongos que forman esta simbiosis tienen una gran
versatilidad en cuanto al uso de fuentes de C, N y P, ya sean
de origen orgánico o no. Esta característica fúngica conere
parte de la capacidad a las plantas que forman este tipo de
micorrizas para crecer en suelos con un elevado contenido
en materia orgánica (PEARSON & READ, 1975). Dentro de
este grupo se distinguen tres subtipos: micorrizas ericoides,
micorrizas arbutoides y micorrizas monotropoides.
Ericoides: Tienen hifas septadas que colonizan la planta
intracelularmente. Las células del hospedante son invadidas
por las hifas intracelulares que forman rizos típicos. No dan
lugar a manto ni poseen red de Hartig. Esta simbiosis se da
entre hongos Ascomycetes (frecuentemente Hymenoscyphus)
y plantas ericáceas (géneros Erica, Calluna, Rhdodendron y
Empetrum) o briótos. La asociación está activa 3 ó 4 semanas
y, cuando la hifa degenera, la célula radical infectada, muere.
Arbutoides: Presentan hifas septadas que colonizan la
planta a nivel intracelular. Pueden desarrollarse con o sin
manto, pero siempre tienen red de Hartig. Esta simbiosis se
da entre hongos Basidiomycetes y plantas ericáceas (géneros
Arbutus y Arctostaphylos)
Fig. 7. Vesícula en el interior de una raíz infectada.
Foto: S. Sánchez Durán.
Fig. 8. Arbúsculos formados por hongos micorrizógenos dentro de
células radiculares de una planta asociada. Foto: S. Sánchez Durán.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009) 73
Hongos simbiontes: micorrizas
Monotropoides: Presentan hifas septadas con coloni-
zación intracelular, desarrollan manto y red de Hartig. Esta
simbiosis tiene lugar entre hongos Basidiomycetes (con fre-
cuencia del género Boletus) y especies de plantas carentes
de clorola del género Monotropa. Estas plantas dependen
de los nutrientes que les aportan sus hongos simbiontes que
toman a través de sus hifas en los árboles próximos.
Micorrizas orquidioides: Tienen hifas septadas con
colonización intracelular. No desarrollan ni manto ni red de
Hartig y son aclorólas en las primeras etapas del desarrollo
de la planta.
El hongo, tras penetrar en las células de la raíz, forma ovi-
llos dentro de la célula hospedadora previa invaginación de la
membrana plasmática, así como agregados de hifas denomina-
dos pelotones, que liberan los nutrientes cuando degeneran.
En su desarrollo, estas plantas sufren un ciclo heterótrofo,
durante el cual dependen de la infección micorrícica para po-
der sobrevivir, al obtener hidratos de carbono de otras plantas
vecinas a través del hongo (SMITH, 1966).
Esta simbiosis tiene lugar entre plantas de la familia Or-
chidaceae y hongos Basidiomycetes, algunos patógenos como
especies de los géneros Armillaria, Fomes, Marasmius y Rhi-
zoctonia (R. solani y R. repens) (GIANINAZZI-PEARSON,
V. & GIANINAZZI, 1983).
Ectendomicorrizas: Estas simbiosis
corresponden a un tipo intermedio entre
las endomicorrizas y las ectomicorrizas.
Con las ectomicorrizas tienen en común
que pueden formar un “manto” más o me-
nos desarrollado y siempre tienen red de
Hartig; con las endomicorrizas comparte
la existencia de una ligera penetración de
las hifas en las células de la corteza, for-
mando enrollamientos u ovillos (YU &
al., 2001). REYNA (2000) nos conrma
la presencia de hifas septadas que coloni-
zan la planta a nivel intracelular.
Estas micorrizas se dan entre hongos
Basidiomycetes o Ascomycetes, y plantas
Gimnospermas o Angiospermas.
FISIOLOGÍA
El carácter mutualista de la simbio-
sis supone que ambos simbiontes resul-
tan beneciados de esta relación: que va
a tener como consecuencia una mejor
nutrición de ambos. Las micorrizas ab-
sorben, desde el hospedante, azúcares
como la fructosa, glucosa o sacarosa y lo
transforman en carbohidratos de reserva,
como el manitol o la trehalosa.
Elementos como el P, N, K, Ca, S,
Zn, Cu, Sr, etc. son absorbidos desde el
suelo y cedidos por las células del hongo
a las de la planta hospedante.
Las micorrizas favorecen el crecimiento de las plantas,
considerándolas como los mejores fertilizantes naturales. La
planta micorrizada posee una mejor capacidad de absorción
de agua y nutrientes, ya que, al ser mayor el volumen radi-
cular, aumenta la supercie de contacto entre raíz y suelo. El
sistema radical se amplía a través del micelio extendido en el
suelo, mejorando el nivel de asimilación de macronutrientes,
absorción de agua y oligoelementos. La asimilación del fós-
foro es diez veces mayor en plantas micorrizadas que en las
no micorrizadas; como consecuencia, el crecimiento es más
rápido en plantas micorrizadas.
Las hifas del hongo son capaces de competir más e-
cientemente que las raíces con otros microorganismos del
suelo por los nutrientes (LINDERMAN, 1992), absorbiendo
fuentes de nutrientes no disponibles para la planta (SWAMI-
NATHAN, 1979).
Sabemos que la infección micorrícica favorece la toma de
los nutrientes por las raíces hospedantes; pero el mayor efecto
sobre la nutrición es el resultado del transporte, por parte de
la hifa de iones minerales, poco o nada móviles. Este proceso
es particularmente importante para la difusión de iones mine-
rales, tales como el fósforo (P) (SUBRAMANIAN & CHA-
REST, 1998). La capacidad de toma de iones con baja velo-
Fig. 9. Micorrizas Vesículo-Arbusculares (VAM). Fuente: Espuny (2008)
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009)74
García Cuesta, G.
cidad de difusión como Zn y Mo y, en menor grado, K, S y
NH
4
+
, depende de la densidad de la raíz por volumen de suelo.
En estos casos, la morfología de la raíz y el micelio externo
del hongo VAM determina la tasa de toma de nutrientes para
la planta (SIEVERDING, 1991). Estos nutrientes transferidos
del hongo a la planta varían según los diferentes tipos de aso-
ciación. Las ectomicorrizas tienen mayor inuencia sobre el
nitrógeno (N) y un menor efecto sobre la nutrición en fósforo
(P), siendo al contrario en las VAM.
Se ha demostrado que el ortofosfato inorgánico (PO
4
-3
)
es la mejor forma en la que el fósforo es transferido por
las ectomicorrizas. En diversos estudios se ha conrmado
la transferencia de otros nutrientes (S, Zn, Cu, Ca y Na) en
varios tipos de micorrizas. La planta aporta carbohidratos
a cambio de nutrientes minerales, cedidos por el micosim-
bionte. Los nutrientes tienen que ser transportados a través
de la membrana plasmática de la planta y del hongo. A ni-
vel celular, la interfase en todos los tipos de micorrizas esta
compuesta de las membranas de ambos patrones, separados
por una región del apoplasto (SMITH & SMITH, 1990). Es
condición necesaria para el movimiento de los nutrientes
entre los simbiontes el desarrollo de una interfase distinti-
va, la cual es modicada, estructural y funcionalmente, para
promover la transferencia; pudiendo existir diferentes tipos
de interfases en diferentes tiempos. Generalmente, son dos
tipos de interfase que están involucradas en el transporte de
nutrientes entre los simbiontes, denominados intercelular e
intracelular. Estos dos tipos de interfases son consecuencia
de la penetración de las hifas en la simbiosis micorrícica
tanto a nivel intercelular como intracelular; zonas donde se
produce el contacto de ambos simbiontes, propiciando el
intercambio de nutrientes. El desarrollo intercelular lo en-
contramos en asociaciones ectomicirrícicas, en las cuales,
el contacto entre el hongo y el hospedante puede ser o bien
entre la envoltura del hongo y la capa externa de células de
la raíces, o bien entre las células corticales y la hifa de la red
de Hartig (e incluso ambos). La fase intercelular se presen-
ta en muchas micorrizas vesículo-arbusculares. En algunas
asociaciones, se ramica la hifa intercelularmente: penetra
la pared de la célula hospedante y crece entre ésta, formando
la fase intracelular tales como arbúsculos, hifas o haustorio.
En muchos de los casos es penetrada únicamente la pared: la
membrana plasmática de la célula hospedante se mantiene
intacta, de tal manera que el micosimbionte se encuentra en
el apoplasto intercelular.
Aplicar técnicas de biología molecular al estudio de la
simbiosis nos permite explicar los mecanismos implicados
en la absorción de nutrientes en el intercambio bidireccional
de los mismos, entre la planta y el hongo. Ambos simbiontes
tienen membranas plasmáticas funcionales capaces de tomar
nutrientes del apoplasto. En las ectomicorrizas, la coexis-
tencia de la actividad de la encima ATPasa en la membrana
plasmática del hongo a la red nos lleva a la conclusión de que
los dos sistemas trabajan cooperadamente en un intercambio
bidireccional. HAUSE & FESTER (2005) nos describen la
transferencia de nutrientes en las raíces micorrícico-arbuscu-
Tabla. 1. Características comparativas de las diferentes micorrizas. Adaptada de Smith & Read (1997).
Tipo VAM ECM Arbutoides Monotropiodes Ericoides Orquideoides
Hifas
Septadas
- + + + + +
Colonización
intracelular
+ - + + + +
Ovillos
de hifas
- - - - + +
Arbúsculos
+ - - - - -
Manto
- + + + - -
Red de
Hartig
- + + + - -
Vesículas
+ - - - - - -
Plantas
Plantas
Vasculares
Gimnospermas
Angiospermas
Ericales
Monotropaceae
Ericales
Orchidaceae
Clorola
+ + + - + + + -
Hongos
Z
Glomales
A
B
A
B
A
B
A
(B)
B
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009) 75
Hongos simbiontes: micorrizas
lares indicando las enzimas y los transportadores que inter-
vienen especícamente en la simbiosis.
Así, exponen cómo el transportador de membrana de los
metabolitos dependerá, lógicamente, del pH y de que sea ac-
tivado por la energía de las H
+
-ATPasas (hidrógeno ATPa-
sas) de la planta y del hongo (ATP -adenosín trifosfato- es la
molécula que interviene en todas las transacciones de ener-
gía que se llevan a cabo en las células). Las H
+
-ATPasas del
hongo no están limitadas a los arbúsculos, sino también son
activas en las hifas intercelulares, siempre que la penetración
sea a nivel intra e intercelular (VAM). La sacarosa, fructosa,
glucosa que llega del oema (tejido conductor encargado del
transporte de nutrientes orgánicos) es hidrolizado y absorbi-
do por la planta o por el hongo, transformándose en trehalo-
sa, o biosintetizándose en glucógeno y lípidos. Las células
de la planta toman fosfato del espacio periarbuscular usando
transportadores especícos. Se han encontrado transportado-
res de nitrato inducidos por la simbiosis con mecanismos de
transporte similares al del fosfato. Por otro lado, se ha detec-
tado el aumento de los niveles de transcripción de una nitrato
reductasa de origen fúngico, indicándonos la transferencia
del nitrógeno en forma reducida (aminoácidos = AA).
Nitrógeno atmosférico.
Otro aspecto muy importante y que ha motivado abun-
dantes estudios en el ámbito micorrícico es la inuencia de
las micorrizas sobre los agentes jadores del nitrógeno at-
mosférico. El nitrógeno, a pesar de ser muy abundante en la
atmósfera, no puede ser utilizado por las plantas en su forma
elemental, debiendo obtenerlo del suelo, principalmente en
forma combinada. Existen microorganismos capaces de jar
nitrógeno atmosférico en la mayoría de los hábitats: suelo,
mar y masas de agua dulce. Sin embargo, la cantidad de ni-
trógeno jado por los microorganismos libres es muy inferior
a la obtenida por las simbiosis entre plantas y microorganis-
mos como especies de Frankia, Rhizobium y Cianobacterias.
La jación biológica la realizan los microorganismos llama-
dos diazótrofos y es un proceso clave en la biosfera, por el
cual microorganismos portadores de la enzima nitrogenasa
convierten el nitrógeno que se encuentra en forma molecular
(N
2
) en nitrógeno combinado, una forma más disponible para
las plantas La enzima nitrogenasa cataliza la reacción de ja-
ción simbiótica de nitrógeno:
N
2
+ 16ATP + 8e
-
+8H
+
---> 2NH
3
+ H
2
+ 16ADP + 16PO
4
-3
Las plantas necesitan el nitrógeno para fabricar aminoá-
cidos, proteínas y ácidos nucleicos. La masiva utilización de
fertilizantes nitrogenados está actuando con claros resulta-
dos negativos, pues tienen demasiados defectos, como los
excesivos costos y, sobre todo, la contaminación, que está
contribuyendo al cambio climático. La jación del nitrógeno
atmosférico es una función tan esencial en la naturaleza que
se ha llegado a considerar la segunda en importancia después
de la fotosíntesis, pues, además de contribuir a la nutrición
de las plantas, también contrarresta el uso excesivo de fer-
tilizantes nitrogenados, que masivamente se agregan a los
cultivos.
Fig. 10. Transferencia de nutrientes en las raíces micorrícico-arbusculares. Esquema tomado de Hause & Fester (2005).
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009)76
García Cuesta, G.
Diversos estudios han demostrado que las micorrizas
desempeñan un papel muy importante en la jación simbió-
tica del nitrógeno atmosférico: estimulando y potenciando
a los microorganismos jadores. Podemos encontrarnos con
tres tipos de simbiosis con plantas, que designaremos según
cual sea el microorganismo simbionte que je el nitrógeno:
Frankia spp., Rhizobium spp. y Cianobacterias.
El género Frankia incluye especies de bacterias lamen-
tosas, mal llamadas actinomicetos (orden Actinomycetales y
familia Frankiaceae), puesto que no son hongos, como se
creyó en un principio, de ahí su nombre. Son jadoras de
nitrógeno que, cuando viven en asociación con plantas acti-
norrícicas (alrededor de 220 especies de angiospermas que
se reparten entre las familias: Myricaceae, Casuarinaceae,
Betulaceae, Eleagnaceae, Rhamnaceae, Rosaceae, y Co-
riariaceae), inducen en sus raíces la formación de nódulos
jadores de nitrógeno. Las plantas actinorrízicas se adaptan
a suelos marginales no sólo por su capacidad de autoabaste-
cerse de nitrógeno, a través de su simbiosis con especies de
Frankia, sino también por su asociación con hongos endo y
ectomicorrícicos (simbiosis micorrícica) que las provee de
muchos nutrientes y, sobre todo, de fósforo, que se moviliza
hacia los nódulos, favoreciendo la jación del nitrógeno.
VALDÉS & al., (2003) realizaron un estudio para eva-
luar la ecacia de la jación de nitrógeno por una especie de
Frankia en raíces del árbol Casuarina equisetifolia, cuando
se inoculaban las plantas con Glomus intraradices o Pisoli-
thus tinctorius. Como resultado de este tratamiento, el volu-
men de las plantas inoculadas aumentó un 10,93 %; además,
se produjo un aumento signicativo en su biomasa y en la
actividad nitrogenasa de los nódulos, así como en el conteni-
do de nitrógeno total de las plantas.
Las Cianobacterias (antiguamente llamadas algas verde-
azuladas o Cianofíceas) son bacterias que poseen la doble
capacidad de jar carbono (por fotosíntesis) y nitrógeno, por
lo que son utilizadas en biofertilización. La jación del ni-
trógeno la pueden realizar tanto libres como formando sim-
biosis con diversos tipos de plantas, desde briótos hasta
angiospermas, e incluso con hongos (la simbiosis entre una
cianofícea y un hongo es un liquen). Muchas cianobacterias
lamentosas desarrollan unas células especializadas en jar
nitrógeno, los heterocistos, los cuales mantienen un intenso
intercambio de metabolitos con las células vegetativas adya-
centes, a las que suministran nitrógeno jado.
El proceso de jación de N
2
en cianobacterias presenta
un alto requerimiento de Ca (calcio), que ha sido relaciona-
do con la resistencia al oxígeno en el heterocisto (GALLON
1992), y, más concretamente, con la estabilidad de la cubier-
ta del mismo, lo que aumenta la protección de la nitrogena-
sa en condiciones de estrés. Las micorrizas, con su aporte
nutricional de Ca, van a favorecer el proceso de jación del
nitrógeno.
Es de gran importancia, dentro de la jación biológica
del nitrógeno, la simbiosis entre leguminosas (plantas agrí-
colamente importantes, como las judías, la soja, el garbanzo,
la alfalfa, el trébol) y bacterias del género Rhizobium.
Estas bacterias (Rhizobium) son capaces de infectar las
raíces de leguminosas y desarrollar unas estructuras especia-
lizadas, conocidas como nódulos, convirtiéndose en el nicho
de las bacterias. Las bacterias de Rhizobium, desde nódulos,
son capaces de tomar el nitrógeno atmosférico y reducirlo
a amonio, jando el nitrógeno. Se estima que este proceso
constituye entre el 60-80 % de la jación biológica de nitró-
geno. La simbiosis es inhibida si existe un exceso de nitrato
o amonio en el suelo.
Muy interesantes son las triples asociaciones: legumino-
sas, micorrizas VAM y bacterias de Rhizobium. Estas últimas,
como ya hemos dicho, jan el nitrógeno mediante la enzima
nitrogenasa, pero el proceso necesita del aporte continuo de
fósforo a los nódulos; desde las VAM el fósforo se moviliza
mil veces más rápido que desde el suelo. De esta manera, las
micorrizas contribuyen de una manera ecaz a la jación del
nitrógeno atmosférico.
TOMA E INTERCAMBIO DE NUTRIENTES
El primer trabajo realizado sobre el intercambio de nu-
trientes lo efectuó MOSSE (1957), en el que exponía cómo
un manzano micorrizado presentaba un mayor contenido en
Fe y Cu en comparación con otro no micorrizado, si bien
ambos crecían en suelos pobres en esos micronutrientes.
Posteriormente, DAFT & NICOLSON (1966), demostraban
cómo los hongos formadores de micorrizas arbusculares me-
joraban la absorción de fosfato por parte de la planta. Más
tarde FREY & SCHÜEPP (1993) conrmaban, también, que
los hongos son capaces de transferir nitrógeno a la planta
mediante la absorción de NH
4
+
, o de la de NO
3
-
(BAGO et
al., 1996) del suelo próximo, para su posterior transferencia.
A continuación, vamos a analizar estos intercambios de nu-
trientes y sus efectos en la simbiosis.
Metabolismo del carbono.
Diferentes estudios nos revelan que la transferencia de
carbohidratos (también llamados hidratos de carbono, glúci-
dos o azúcares) es el principal benecio que obtiene el sim-
bionte fúngico en la asociación micorrícica.
La primera manifestación experimental sobre la transfe-
rencia de compuestos carbonados de la planta al hongo fue
proporcionada por HO et TRAPPE (1973) quienes, usando
14
CO
2
demostraron que, tras unas semanas, se detectaba C
14
marcado en el micelio del hongo. DOUDS et al. (2000) con-
rmaron en otros experimentos que, a corto plazo, la glucosa
era transformada principalmente a trehalosa o glucógeno.
Debido al carácter de biotrofos obligados de los hongos
micorrícicos, sus hifas extrarradicales son incapaces de ab-
sorber carbohidratos del medio.
PFEFFER et al.,(1999) conrmaron, mediante la aplica-
ción de varios compuestos marcados con
13
C en placas de petri,
la incapacidad de las hifas extrarradicales para tomar carbohi-
dratos; asimismo, este estudio explicaba la absorción de gluco-
sa y fructosa por las estructuras intrarradicales del hongo.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009) 77
Hongos simbiontes: micorrizas
Por tanto, el micelio extrarradical depende del aporte
de productos carbonados, dada su incapacidad para absor-
ber hexosas del medio (BAGO et al., 2000). Recientemente,
se ha demostrado que los lípidos y el glucógeno se trans-
eren al micelio extrarradical desde el micelio intrarradical
(BAGO et al., 2003). Una vez en el micelio extrarradical,
los compuestos lipídicos se transformarán en carbohidratos
mediante gluconeogénesis.
En los hongos micorrícicos existe una compartimenta-
ción del metabolismo, de forma que las capacidades de sínte-
sis lipídica sólo residen en el micelio intrarradical, mientras
que las capacidades gluconeogénicas se sitúan únicamente
en el micelio extrarradical.
Metabolismo del Fósforo (P)
Diversos estudios han puesto de maniesto que la ma-
yoría de las plantas aumenta la absorción de fósforo al esta-
blecer asociaciones micorrícicas (RAGHOTHAMA, 1999;
RAUSCH & BUCHER, 2002), pudiendo llegar a ser respon-
sables del 100% de la incorporación de fosfato en algunas
especies vegetales (SMITH et al., 2004).
El movimiento de fosfatos en las VAM ocurre en tres
etapas: la absorción por la hifa en el suelo, la translocación a
la hifa dentro de la corteza radical mediante los puntos de en-
trada y la liberación hacia la planta. El hongo probablemente
toma el fosfato del suelo, principalmente en la forma de io-
nes ortofosfato. Se cree que la translocación de este fosfato
a la raíz ocurre principalmente mediante ujo citoplasmático
de los gránulos polifosfatados en las vacuolas del hongo.
La absorción del fosfato es un mecanismo altamente e-
ciente, lo que se pone de maniesto por la rápida incorpora-
ción de fósforo por las hifas del micelio extrarradical, que
requiere de tan sólo tres horas para alcanzar los niveles máxi-
mos de incorporación de polifosfato (EZAWA et al., 2004).
Sabemos que la concentración intercelular del fosfato en
el hongo y la planta afecta al transporte; así, altas concen-
traciones de fósforo en la interfase de la hifa pueden, con el
tiempo, reducir la reabsorción. Para evitar la acumulación
de iones fosfato, que afectarían al funcionamiento normal
del hongo por un aumento de la presión osmótica, dichos
iones se polimerizan formando cadenas de polifosfato, que
se acumulan fundamentalmente en las vacuolas (RASMUS-
SEN et al., 2000). El fosfato así acumulado en el interior de
las vacuolas es transportado al micelio intrarradical. Una vez
que está en el micelio intrarradical, el polifosfato es hidroli-
zado, liberándose el fosfato mediante la actividad de ciertas
fosfatasas alcalinas presentes en la vacuola (GIANINAZZI-
PEARSON & GIANINAZZI, 1978).
Metabolismo del Nitrógeno (N)
Estudios con radioisótopos revelan que el micelio exter-
no del hongo puede aprovechar el nitrógeno inorgánico del
suelo ecazmente y transportarlo entre 10-30 cm a través del
suelo. Como consecuencia, los hongos micorrícicos pueden
transferir nitrógeno del suelo, próximo a la planta, de dife-
rentes formas: bien mediante la absorción de NH
4
+
, NO
3
-
, o
Fig. 11. Pisolithus arhizus (=Pisolithus
tinctorius) tiene una siología que le
permite soportar concentraciones ele-
vadas de metales pesados (Pb, Zn, Hg,
..) y de elementos tóxicos para las plan-
tas, de manera que los capta y elimina
de la zona de absorción de las raíces,
permitiendo a los árboles vivir en zonas
contaminadas. Este hecho es de gran
importancia a la hora de plantear repo-
blaciones en minas abandonadas, cen-
trales nucleares, etc.
Foto: J. M. Velasco.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009)78
García Cuesta, G.
bien, existe cierta capacidad de transporte de N orgánico, es-
pecialmente en aminoácidos. Al parecer, los hongos micorrí-
cicos preeren como fuente de N al amonio frente al nitrato
(JOHANSEN et al., 1996. BAGO et al. (1996) mostraron
que Glomus intraradices es capaz de tomar nitratos (NO
3
-
) y
translocarlo a la planta.
En la asimilación del nitrato, parece estar implicada la
enzima nitrato reductasa, cuya actividad se ha detectado
tanto en esporas como en extractos de raíces micorrizadas
(SUBRAMANIAN & CHAREST, 1998), permitiendo la re-
ducción del nitrato para su posterior incorporación a la glu-
tamina en forma de amonio.
La incorporación del amonio se lleva a cabo mediante
transportadores especícos, de los que actualmente tan sólo
se ha aislado uno en Glomus intraradices (LÓPEZ-PEDRO-
SA et al., 2006). El amonio así absorbido se incorporaría rá-
pidamente el glutamato, para dar glutamina, probablemente
siguiendo el ciclo de la glutamina sintetasa/glutamato sintasa
(GS/GOGAT), procesos ampliamente detectados y conrma-
dos en hongos micorrícicos (JOHANSEN et al., 1996).
Glutamato + NH
3
+ ATP ------> Glutamina + ADP + Pi
La glutamina sintetasa es una enzima regulable que con-
trola el metabolismo del nitrógeno. La transferencia de N
hasta su nal absorción por la planta ocurre por un proceso
asociado al ciclo de la urea y al transporte de polifosfato,
propuesto ya por BAGO et al. (2001) y conrmado por GO-
VINDARAJULU et al. (2005).
Comienza con la en-
trada del amonio o nitrato
a las hifas extrarradicales,
donde el nitrato, como
hemos visto anteriormen-
te, será transformado en
amonio por la nitrato re-
ductasa; dicho amonio,
mediante la acción de la
glutamina sintetasa (GS),
se transforma en glutami-
na que, mediante el ciclo
de la urea, se convierte en
arginina.
La transferencia al
micelio intrarradical se
lleva a cabo en forma de
arginina, asociada a los
polifosfatos. Una vez en
el micelio intrarradical, la
arginina entraría a formar
parte de nuevo del ciclo de
la urea, liberándose orniti-
na y urea que, por acción
de la ureasa y la ornitina
aminotransferasa, libera-
ran el amonio que será así
transferido a la planta.
El ciclo de la urea lo podríamos resumir de la siguiente
manera:
2NH
4
+ HCO
3
-
+ 3ATP + H
2
O ---> UREA +2ADP + 4Pi + AMP + 5H
+
Estudios realizados en maíz (Zea mays) infectado con
G. intraradices, evidencian que el transporte de la hifa a
la planta fue del 33%, aunque este dato puede variar con
la compatibilidad funcional del hongo. JOHANSEN et al.,
(1996) indican que ambas formas de nitrógeno NO
3
-
y NH
4
+
son asimiladas en el micelio del hongo.
Metabolismo de micronutrientes
Como hemos estudiado anteriormente, los hongos mi-
corrícicos actúan como tamponadores (equilibradores) sobre
el nivel de metales pesados en la planta micorrizada. Este
efecto se ve ampliado con la propiedad de controlar el su-
ministro de micronutrientes a la planta, dependiendo de los
niveles de concentración de los suelos, bien para aumentar, o
bien para disminuir la incorporación de metales a los tejidos
vegetales (DIAZ et al., 1996; CHEN et al., 2004). El efecto
protector de las micorrizas sobre los tejidos de la parte aé-
rea de la planta se ha observado para Cu, Al, U, As, Sr, Cs,
Cd, y Mn. Esta protección es debida a la inmovilización del
metal, fundamentalmente en el micelio externo (JONER et
al., 2000), aunque también ha sido advertido en estructuras
intrarradicales como vesículas o, intracelularmente, como en
los gránulos de polifosfato (TURNAU et al., 1993).
Fig. 12. El prof. José Sánchez (izda.) y el autor en los invernaderos del C.I.A.L.E. de Villamayor (Salamanca).
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 67-81 (2009) 79
Hongos simbiontes: micorrizas
Por otra parte, sabemos que la movilidad de Cu, Zn, Mn
y Fe en los suelos es baja, por lo que la toma de estos nu-
trientes por las raíces es limitada pero, como hemos visto
anteriormente, las plantas micorrizadas resuelven esta de-
ciencia al poder tomar más nutrientes metales mediante las
hifas extraradicales. LIU et al., (2000) descubrieron que la
contribución en la toma de Cu, Zn, Mn y Fe en maíz está
signicativamente inuenciada por los niveles de P y micro-
nutrientes en el suelo.
BENEFICIOS Y APLICACIONES DE LAS
MICORRIZAS
Como consecuencia de todo lo anteriormente expuesto
en este artículo y, a modo de resumen-repaso, la micorriza-
ción va a producir en las plantas una serie de benecios que
van a determinar su desarrollo; entre ellos, podemos citar una
mejor nutrición mineral: lo que tiene como resultado un ma-
yor crecimiento de las plantas, es decir, mayor desarrollo de
su biomasa. Igualmente, implica un aumento en la nutrición
fosforada: que le va a suponer a las plantas aumentar la adqui-
sición de elementos nitrogenados y la tasa fotosintética.
Otro aspecto muy importante es que las micorrizas au-
mentan la resistencia al estrés hídrico: ya que las hifas ex-
ternas del hongo pueden captar agua más lejos de la zona de
sequía. La micorrización inuye en la tolerancia de las raíces
a agentes patógenos, protegiendo al sistema radical a través
de procesos bioquímicos y otorgando a la planta un mejor
sistema de defensa contra enfermedades.
Las micorrizas se presentan, en la actualidad, como una
buena alternativa en la biorremediación y reforestación de
suelos contaminados con metales pesados e hidrocarburos;
recuperación de espacios ambientalmente desfavorables,
como por ejemplo, estrés hídrico y salino, pH extremos, ex-
ceso de viento (minimizando la pérdida de suelo), zonas in-
cendiadas o degradadas por faenas mineras o industriales.
La micorrización tiene, además, otras importantes apli-
caciones tanto en horticultura como en silvicultura, para la
mejora en la calidad de las plantas, y no debemos olvidar,
asimismo, su aplicación en plantas forestales en la produc-
ción de hongos comestibles (trufas, níscalos y boletos).
Agradecimientos
Quisiera agradecer a todos cuantos me han apoyado en
la realización de este trabajo, pues bien con sus consejos o,
simplemente, con sus ánimos, me han ayudado a caminar
por las complicadas sendas micorrícicas. Y, en especial, a
mi familia, por su comprensión y sus labores académicas:
corrigiendo, jando y dando esplendor a este artículo. He
de destacar, además, la ayuda tutorial de José Sánchez Sán-
chez (Responsable del Grupo de Palinología y Conservación
Vegetal Centro Hispano-Luso de Investigaciones Agrarias
-CIALE-Salamanca), así como agradecer a Sergio Sánchez
Durán (perteneciente al Centro de Investigación y Tecnolo-
gía Agroalimentaria -CITA- de Aragón, en Zaragoza) por las
imágenes microscópicas cedidas. Para nalizar, mi gratitud
a Juan Manuel Velasco Santos, por su desinteresada ayuda
y revisión del manuscrito. Si con este pequeño trabajo he
podido despertar el interés de alguno de ustedes por el tema,
me siento más que satisfecho; y les agradezco el tiempo de-
dicado para leerlo.
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Bol. Micol. Lazarillo, 4: 82-85 (2009)82
P
oco a poco los días se acortan; el sol de justicia va
aojando su presión, dejándonos respirar y, aunque
exprimidos por los sudores pasados, nos asomamos
titubeantes al balcón de la esperanza. Abajo, un gato juega
entre las parras ya cargadas de uvas blancas y doradas que
acarician el suelo; arriba, el cielo se empieza a llenar de aves
migratorias que se arremolinan junto a la línea que dibuja un
horizonte, allá donde las nubes pintan con grises goyescos
los atardeceres de mis paseos. Más pronto que tarde cae la
noche y un dormilero desde su rama me canta: “¡A dormir!,
¡a dormir!”. Inexorablemente, como cada año, la puerta del
otoño ya se ha abierto y, lleno de ilusiones, miro al cielo
implorando la lluvia reparadora para los campos resecos de
Castilla y León, a la vez que recuerdo a Machado: “Poned
sobre los campos / un carbonero, un sabio y un poeta./ Veréis
cómo el poeta admira y calla,/ el sabio mira y piensa.../ Se-
guramente, el carbonero busca/ las moras o las setas”.
Pero la puerta del otoño me abre a un campo más am-
plio aún, el de los encuentros semanales con amigos, que
refrescan y reparan las semanas con aquello esencial en lo
que todos coincidimos ante la pregunta que, un día, les lancé
acerca de lo que encontraban en nuestra sociedad micoló-
gica; las contestaciones fueron muy variadas, aunque todas
venían a coincidir en algo esencial: “conocimientos micoló-
gicos y amistad”.
Subrayaría que los conocimientos se pueden adquirir de
muy diversas maneras, tanto dentro como fuera de las aso-
ciaciones micológicas; sin embargo, la amistad que hemos
encontrado en Lazarillo está por encima de todas las condi-
ciones sociales y credos: es la amistad por la amistad, que se
ve reejada a lo largo de todas las actividades que se llevan
a cabo y que podremos recordar en esta corta crónica de los
dos últimos años. Ahora bien, aunque los sentimientos no se
pueden pesar como las setas, escuchemos a la razón, pero
dejemos hablar a los sentimientos.
Los otoños del 2007 y 2008 se presentaron cargados de
ilusiones y esperanzas, pese a que pronto fueron historia de
lo que podrían haber sido y no fueron. Sequías y fríos tem-
pranos dieron al traste con muchos de los sueños micoló-
gicos que habíamos previsto; no obstante, a pesar de este
panorama, las noches de los lunes se vieron muy concurridas
de socios y acionados para poder ver y conocer algunas,
sino todas, las especies. ¿Y quién dijo miedo? Como la fe
mueve montañas... afrontamos las XVII y XVIII Jornadas
Micológicas, respectivamente, con mucho trabajo e ilusión,
obteniendo unos brillantes resultados, como brillantes fueron
las conferencias magistrales pronunciadas
por dos micólogos de reconocida valía:
Miguel Higelmo sobre el género Entolo-
ma (2007) y Luis Alberto Parra sobre el
género Agaricus (2008). Las exposiciones
en la Plaza de la Libertad fueron visita-
das masivamente por los salmantinos que,
año tras año, nos honran con su presencia y
preguntas. Tras los paréntesis vacacionales
de navidad, comenzaron las conferencias
micológicas a la espera de la temporada de
primavera. Las altruistas charlas de nues-
tros compañeros fueron muy interesantes
y llenas de fundamentos cientícos que vi-
nieron a enriquecer los conocimientos de
los numerosos asistentes que llenaron el
auditorio.
Todos estábamos muy ilusionados con
el nuevo orecer de la naturaleza, sobre
todo, porque los otoños nos habían deja-
do a medias; pero la mala racha siguió y
Conferencia de Miguel Higelmo sobre el género Entoloma en la P. Ibérica. Foto: Luis A. Fernández.
CRÓNICAS LAZARILLENSES:
RESUMEN DE LAS ACTIVIDADES DE LA
SOCIEDAD MICOLÓGICA SALMANTINA DURANTE
LOS AÑOS 2007, 2008 Y 2009.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 82-85 (2009) 83
Crónicas Lazarillenses: repaso de las actividades de la Soc. Micol. Salmantina durante los años 2007, 2008 y 2009
las dos primaveras fueron cortas y pobres en especies. Llu-
vias a destiempo, calores tempranos, el cambio climático…
¡qué más da! Dicen que “el que vive de esperanzas, muere
de sentimientos” y aquellas primaveras tuvieron, como en el
tenis, una muerte súbita. A pesar de todos los contratiempos,
la Sociedad Lazarillo tenía dos cartas bajo la manga y, no
sólo no morimos de sentimientos sino, más bien, vivimos
para los sentimientos. Y así, dos excursiones de confrater-
nidad vinieron a poner un contrapunto a tantas penalidades
atmosféricas.
En la primavera del 2008 realizamos la ruta de las Cas-
cadas de Sotillo, una de las más hermosas de las que se
pueden transitar en el Parque Natural del
Lago de Sanabria (Zamora). Considerada
de dicultad media, salva un desnivel de
unos 500 metros saliendo del pueblo de
Sotillo de Sanabria y recorre una distancia
aproximada de 6 kilómetros por un camino
ascendente, trazado sobre la cara norte del
valle del río Truchas, a través de un her-
moso bosque donde los acebos se entre-
mezclan con robles, abedules, avellanos,
servales…
En este verde e idílico paraje, ores,
musgos, líquenes y setas aportan el colori-
do y ceden al murmullo del agua la melo-
día del canto de los pájaros. En lo alto de
una rocosa escalinata con forma de grada
natural van sentándose mis compañeros
frente a las cascadas: “Las Cascadas de
Sotillo”. Inspiro profundamente aire y per-
manezco unos instantes contemplando la
hermosa postal que nos hemos ganado tras
Excursión a Navalguijo en la primaverra de 2009. Foto: Juan Manuel Velasco Santos.
Excursión a la Cascada de Sotillo en la primavera de 2008. Foto: Gerardo J. García Cuesta.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 82-85 (2009)84
el esfuerzo. Unas vallas de troncos de madera nos protegen
del precipicio; arriba y a la izquierda, el espectáculo está ser-
vido: las aguas que provienen de la Laguna de Sotillo, situa-
da a 1.600 metros de altitud, caen con gran estruendo, aca-
riciando la quebrada a modo de colas de caballo sobre el río
Truchas. Es hora de reponer fuerzas y nos encontramos en
el sitio ideal para disfrutar de su bello torrente. Poco a poco,
todos los senderistas van llegando uniéndose a un tentempié
campero. Una bota de vino pasa por manos de los comensa-
les, al mismo tiempo que las fotos inmortalizan para siempre
el recuerdo de estos hermosos momentos.
No menos fascinante fue la excursión que
realizamos en la primavera del 2009 a Naval-
guijo. Situado en la Sierra de Gredos, la natu-
raleza se prodiga exuberante policromando el
abrupto paisaje en el que dominan los amari-
llos de los piornos. Al borde del camino, va-
mos encontrando plantas medicinales y setas.
El ombligo de venus pinta de verde las graní-
ticas paredes que, a veces, se tornan rojizas,
teñidas por el liquen Caloplaca ferruginea. Yo
abro los ojos como platos, a la vez que estiro
mis orejas, para no perderme ninguna de las
explicaciones que mis compañeros de anda-
dura van amablemente desgranando. En las
praderas, la humedad es abundante, los verdes
sirven de fondo a la sinfonía de colores que
producen las ores, recordándome a Van Gogh
pero, entre todas ellas, destacan majestuosas y
señoriales cientos de orquídeas.
La tarde va cayendo y el sol sale a des-
pedirse de nosotros que, en un bar situado en el medio del
monte, vamos juntándonos para compartir alrededor de unas
tazas de café nuestras experiencias vividas en la jornada.
Cuando monto en el autobús camino de Salamanca tengo
una sensación de sobredosis en conocimiento de plantas y en
amistad, ¿y quién dijo que esto fuera malo en un mundo tan
necesitado de buenos momentos?. Gracias, compañeros, por
tan maravillosa jornada, por ese día a día que, a lo largo del
camino de la vida en el que vamos compartiendo nuestras in-
quietudes, aciones y hasta los vinos en las noches mágicas
de los lunes, es elixir y energía
para la lucha cotidiana.
Y la vida sigue inexorable-
mente, sucediéndose los acon-
tecimientos en nuestra viva
sociedad micológica, encon-
trándonos de lleno en un nuevo
otoño que, aunque tardío por
las retrasadas lluvias, poco a
poco ha venido dando sus fru-
tos de manera irregular por las
tierras salmantinas. Así, antes
de que estas crónicas apare-
cieran, celebrábamos las XIX
Jornadas Micológicas Lazarillo
que, aunque intensas, han pasa-
do en un abrir y cerrar de ojos
de cuantos tuvimos el regusto
de saborearlas con mas ilusión,
si cabe, que nunca.
Abrió Juan Carlos Zamora,
lleno de maestría y conocimien-
tos, el banquete micológico de-
leitándonos con sus hermosas y
Detalle de la exposición de 2008. Foto: Luis A. Fernández.
Detalle de la exposición de 2007. Foto: Luis A. Fernández.
Crónicas Lazarillenses: repaso de las actividades de la Soc. Micol. Salmantina durante los años 2007, 2008 y 2009
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 82-85 (2009) 85
Crónicas Lazarillenses: repaso de las actividades de la Soc. Micol. Salmantina durante los años 2007, 2008 y 2009
sosticadas amanitas, a pesar de que algunas de ellas eran
“venenosísimas” -como hace años me dijera una señora mi-
rando mi cesta-. ¡Que no cunda el pánico!, la cata sólo fue a
nivel de proyección informática.
Al día siguiente, como hormigas, los “lazarillos” nos
desplegamos por esos campos en busca de setas para la ex-
posición, llevando nuestras ilusiones al hormiguero situado
en la Alberca, donde comimos y entregamos, durante los
postres, los premios al primer concurso de carteles.
Decía Unamuno: “Todo acto de bondad es una demos-
tración de poderío”. A pesar de las circunstancias climatoló-
gicas, fueron muchas las bondades que pusimos para la exhi-
bición anual; por este motivo, al día siguiente, la muestra fue
una hermosa tarta nal en comunión con los salmantinos.
Quiero acabar este breve escrito con una anécdota que
me sucedió al terminar mi última charla micológica. Un cul-
to y socarrón profesor se levantó y con gran ceremonia me
preguntó: “Pero, vamos a ver, como conclusión nal, ¿las
micorrizas se comen o no se comen?”.
Dani colaborando en las jornadas de 2009. Foto: Luis A. Fernández.
Conferencia de Juan C. Zamora sobre el género Amanita. Foto: Luis
A. Fernández.
Gerardo Garcia Cuesta
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 86-87 (2009)86
Reseñas biliográcas
E
sta publicación es de lo más completo en cuanto al
orden Boletales que yo he tenido en las manos. Abor-
da, como dice el autor, los grupos de boletales que
presentan un himenóforo constituido por tubos.
Es una guía de muy fácil manejo desde el primer momen-
to, amplia en cuanto a los taxones que trata y muy completa
tanto en las descripciones como las explicaciones didácticas
que el propio autor incluye en la mayoría de ellas. Estas últi-
mas ayudan mucho para diferenciar especies que se parecen
mucho; lo cual es de gran ayuda para las personas que no
sean expertas. Al incluir caracteres microscópicos también es
adecuada para expertos y personas ávidas de información.
Como guía de campo puede resultar un poco grande
(21,5 x 13,5 cm), pero tiene una clave a la cual se puede re-
currir y determinar la especie fácilmente; con lo cual, aunque
no es de un tamaño muy manejable, es muy útil.
Las chas de cada especie son muy completas como indi-
caba anteriormente, además contienen una o más fotografías ,
de muy buena calidad aunque algo pequeñas, de cada especie
y la comestibilidad; aparte de las características macroscópi-
cas, que son las que suelen traer casi todas las guías. Incluye,
asímismo, etimologías, cronología taxonómica, reacciones
químicas, características microscópicas, corología y el ya ci-
tado comentario de cada uno de los taxones. Respecto de la
distribución geográca, me parece incompleta, pues aunque
está basada rigurosamente en la literatura micológica escrita;
hay especies que se sabe que se han cogido en otras provin-
cias aunque no se hayan publicado.
Considero que es muy útil el sistema de colores en el
borde del libro para encontrar rápidamente los diferentes gé-
neros, con lo que puedes ir a cada apartado directamente una
vez memorizados los colores, al menos para los grandes gé-
neros como Boletus (color naranja), Leccinum (color azul),
Suillus (color rosa) y Xerocomus (color verde).
Como conclusión, he de decir que es uno de los mejo-
res y mas completos libros de boletos que haya manejado, y
tiene el aliciente de exponer alguna especie no documentada
en España hasta la actualidad; por lo tanto es muy recomen-
dable.
E
s muy de agradecer la edición de este tipo de publi-
caciones, aunque sean de un nivel altamente técnico,
más pensado para profesionales de la Micología que
para acionados.
Esta obra forma parte de una colección Fungi Europaei,
editada por Edizioni Candusso en Italia, con el ánimo de po-
ner al día el conocimiento micológico europeo. Está dedica-
da a los géneros Agaricus (parcialmente) y Allopsalliota.
Como es habitual en esta colección, está monografía se
estructura en una amplia introducción con 15 apartados, una
serie de claves de identicación de los géneros de la tribu
Agariceae, de los subgéneros del género Agaricus y de las
secciones y subsecciones del subgénero Agaricus; así como
la circunscripción actual y la historia del género Agaricus.
A continuación se pasa revista a 35 especies, de las que se
muestra: sinonimias, diagnosis original en latín, el tipo, des-
cripción macroscópica, descripción microscópica, reaccio-
nes químicas, formas de fructicación, hábitat, distribución,
comentarios nomenclaturales y comentarios taxonómicos.
Al nal contiene un apartado amplio (más de 230 pági-
nas) sobre iconografía con abundantes fotografías de gran
calidad, tanto macroscópicas como microscópicas, así como
ilustraciones de láminas de publicaciones antiguas. Se cierra
el libro con una amplia bibliografía y diversos apéndices y
un índice de especies.
En el debe hay que decir que este libro no recoge todas
las especies del género Agaricus, sino sólo 35 de ellas. Se
hecha en falta una clave de identicación en la que se recojan
todas las especies del género.
El que estas publicaciones se editen en dos idiomas, en
este caso castellano e inglés (aunque las claves también se
muestran en italiano), creemos que hace que estos libros,
además de voluminosos, se encarezcan. Se habría preferido
un solo volumen en castellano y otro en inglés con toda la
información junta del género en cada uno de ellos, pero hay
que decir que es un asunto que decide el editor.
Sólo nos queda felicitar y dar la enhorabuena al autor de
forma muy intensa por el enorme esfuerzo que ha hecho, y
por lo que le queda por hacer.
CALZADA DOMINGUEZ, A. (2007). Guía de boletos de España
y Portugal. Náyade. Medina del Campo (Valladolli).
PARRA, L.A. (2008). Agaricus L. Allopsalliota Nauta & Bas. Fungi
Europaei. Parte I. Ed. Candusso. Alassio (Italia)
Javier Mateos Juan Manuel Velasco Santos
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 86-87 (2009) 87
Reseñas biliográcas
S
etas de Ávila de Rafael Aramendi y Horacio González
es, como indica el propio subtítulo, una guía básica de
campo. Sin mayores pretensiones cientícas, es un tra-
bajo “abreviado”, sencillo y bien estructurado que puede ser
de gran ayuda para aquellos que se inician en el conocimien-
to de la Micología.
Aunque especíco de la provincia de Ávila, ofrece una
serie de fundamentos básicos de utilidad: características, im-
portancia, ecología, clasicación y hábitats de los hongos,
así como nociones prácticas para la localización, identica-
ción y recolección de los mismos.
Su nalidad didáctica está claramente explicitada
“convertir a los simples micófagos en micólos respetuosos
con el entorno”.
Basándose en una espléndida fotografía la obra resulta
atractiva y de fácil manejo. Tal vez podría mejorarse la guía
cromática para la clasicación de las setas.
Nos presenta 183 chas de setas (“hongos superiores que
producen cuerpos fructíferos”) en las que además de la fo-
tografía, la especie, el orden y la familia a la que pertenecen;
ofrecen una breve y clara descripción del hongo, seguida del
hábitat y la época del año en la que suele aparecer. En el
apartado de observaciones se hace una valoración del interés
gastronómico basada en la experiencia personal de los auto-
res y sin entrar en las controversias que suscitan la comesti-
bilidad de algunas especies.
La obra se completa con un glosario de términos emplea-
dos y un índice de las especies presentadas.
ARAMENDI R. & H. GONZALEZ. (2007). Setas de Avila. Guía
básica de campo. Sociedad Micológica Amagredos. Cuevas del Va-
lle (Avila). .
Isabel de Santiago
Esta guía de setas de reciente publicación ha sido rea-
lizada por dos micólogos de nuestra región, Aurelio y Juan
Antonio, ambos con una amplia experencia en el campo de
la edición de obras de Micología. Ya tenían publicadas varias
obras sobre Setas de Castilla y León, y en esta ocasión han
dado el salto hacia un área mucho más extensa.
Esta obra requiere mucho trabajo, pues compila 1.450
especies, y conseguir fotos de todas ellas precisa de mucho
tiempo de trabajo de campo. Se estructura como una guía al
uso, con una introducción sobre caracteres macroscópicos y
microscópicos de las setas, que para mi gusto queda un poco
escueto, pero que seguramente no quisieron ampliar, pues el
libro tiene más de 800 páginas. A continuación, se describen
los síndromes sobre toxocidad de las setas. El grueso de la obra
lo componen las chas de las especies, tres por pareja de pági-
nas, a un lado las imágenes y en la otra página los textos; estos
son escuetos pero sucientes, aunque se hecha en falta destacar
aquellos caracteres taxonómicos que sirven para diferenciar
una especie de otras próximas. Las ilustraciones están bien
pero con poco contraste de colores; siempre es difícil conseguir
ajustar bien en las grácas los colores de una impresión.
Termina el libro con los apartados habitules de un glosa-
rio de términos micológicos, un índice de especies, ordena-
das por géneros, algo no habitual, y otro de nombres vulga-
res; y por último una relación de referencias bibliográcas
bastante extensa.
Por último, quiero señalar que en una obra de esta enver-
gadura se suelen colar errores, en este caso de tipo taxonó-
mico o nomenclatural, como el subjo latino de las subclases
que debe ser –mycetidae, y no –mycetideae. Igualmente, la
clase Basidiomycetes, no se puede subdividir en otras clases,
lo que se deduce de terminar los grupos en el sujo latino
–mycetes; sino en subclases con el sujo -mycetidae. Asimis-
mo, la alternativa a Phragmobasidiomycetes debe ser Holo-
basidiomycetes, no Homobasidiomycetes.
En resumen, una guía de setas de la Península Ibérica
con más de un millar de especies que siempre es de agrade-
cer para los acionados a la micología. ¡Enhorabuena a los
autores y a la editorial por el trabajo!
GARCÍA BLANCO, A. & J.A. SANCHEZ RODRÍGUEZ (2009).
Setas de la Península Ibérica y de Europa. Everest. León.
Juan Manuel Velasco Santos
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 88-90 (2009)88
OBJETIVOS
E
l Boletín Micológico “LAZARILLO” (ISNN 1886-
466X) es una publicación de la Sociedad Micológica
Salmantina Lazarillo, con sede en Salamanca (Casti-
lla y León). Título abreviado: Bol. Micol. Lazarillo.
La nalidad del mismo es contibuir a la difusión de
conocimientos micológicos de todo tipo entre sus asociados
y para cuantos acionados y micólogos deseen prestar aten-
ción a los trabajos expuestos en sus páginas.
El ámbito de estudio geográco preferentemente será la
provincia de Salamanca y en segundo término la Comunidad
de Castilla y León.
CONTENIDO DEL BOLETÍN
Se podrán publicar artículos cientícos referentes a Mi-
cología básica: (Taxonomía, Nomenclatura, Sistemática,
Corología, Ecología, Terminología, Metodología, etc.); así
como, de temática relativa a zonas frontera de la Micología
con otras ciencias: Micología industrial, Micología forestal y
agrícola, Fungicultura (cultivo de setas), Nutrición, Micolo-
gía médica y veterinaria, Fitopatología fúngica, Micotoxico-
logía, Etnomicología, Historia de la Micología, etc.
Igualmente, tendrán cabida otros trabajos relacionados
con los hongos que a juicio del Comité Editorial se conside-
ren de interés: exposiciones, poesía, cuentos, curiosidades,
material didáctico, etc.
NORMAS PARA LA PRESENTACIÓN DE
TRABAJOS
1.- Normas generales
Los trabajos serán presentados en castellano remitién-
dose al editor del Boletín, Juan Manuel Velasco Santos, bien
mediante correo electrónico: juanmvs@telefonica.net/ o
por correo postal: c/ Pontevedra, 18-20, 1ºC. 37003-SALA-
MANCA.
Los trabajos serán enviados antes del 30 de abril de los
años impares (2007, 2009, ...). Los cuales serán examinados
por el Comité Editorial para decidir su posible publicación
y se entregará una copia a dos revisores para que emitan
un informe sobre su adecuación a las normas y su validez
cientíca. Los trabajos podrán ser rechazados, aceptados sin
cambios o aceptados con modicaciones propuestas. Si son
aprobados con modicaciones se remitirán a los autores para
que efectúen los cambios que se proponen por parte de los
revisores. En caso de que no haya coincidencia de criterio
entre los revisores, o de que el autor no quiera cambiar el tra-
bajo según las propuestas sugeridas, será el Comité Editorial
el que decidirá la publicación o no de dicho trabajo, a la vista
de las razones o justicaciones del autor.
Los táxones de categoría superior a género deberán lle-
var indicada de forma abreviada dicha categoría o nivel taxo-
nómico. Por ejemplo: Reino = R.; Phylum = Ph. (equivalente
a División = Div.); Clase = Cl.; Orden = O.; Familia = F.
Se admitirán por igual los términos taxon y taxón (en plu-
ral táxones y taxones), aunque se preere la primera forma.
2.- Título y autores
El título será lo más informativo y breve posible. Se
escribirá en mayúsculas y redonda, cuerpo de 14 puntos y
estilo times y negrita. Si en el mismo guran táxones en la-
tín, estos deberán ir en letra cursiva y acompañados del/los
autor/es correspondiente/s.
Los autores gurarán debajo en letra mayúscula de 12
puntos, arial narrow y normal con su dirección postal y e-
mail en minúsculas; si se pertenece a una asociación micoló-
gica podrá indicarse su denominación de forma abreviada. Si
son dos o más autores se escribirán uno debajo de otro. Todo
ello centrado en la página.
Ejemplo:
VELASCO SANTOS, J.M.; c/ Pontevedra, 18,1ºC.
37003-SALAMANCA (Salamanca);
Soc. Micol. Salm. Lazarillo; e-mail:juanmvs@telefonica.net
3.- Resúmenes y palabras clave
Se incluirá un resumen en castellano en un solo párrafo
de no más de 100 palabras. Hará referencia a lo más impor-
tante del traajo.
Se acompañarán de un máximo de ocho palabras clave,
procurando no repetir las incluidas en el título. Los nombres
de los táxones en latín se escribirán en cursiva.
4.- Normas para el texto
El texto se escribirá en cuerpo de 12 puntos, times nor-
mal y a espacio y medio de interlineado. La caja de texto con
2 cm de margen a cada lado y 2,5 cm arriba y abajo.
NORMAS DE PUBLICACIÓN PARA EL
BOLETÍN MICOLÓGICO LAZARILLO
DE LA SOC. MICOL. SALMANTINA LAZARILLO
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 80-90 (2009) 89
Normas de publicación para el Boletín Micológico Lazarillo
El texto se compondrá, en la medida de lo posible, de
los apartados siguientes, INTRODUCCIÓN, MATERIAL
Y MÉTODOS, RESULTADOS, DISCUSIÓN, AGRADE-
CIMIENTOS y REFERENCIAS (libros, artículos, páginas
webs, etc.). Los posibles subapartados vendrán en cursiva
minúscula y negrita: Material estudiado, Estudios de campo,
Medio físico, Hábitat, Macroscopía, Riqueza, Diversidad,
Microscopía, Productividad, Observaciones, etc.
La primera línea de cada párrafo estará sangrada con el
tabulador (1 punto). Todos los nombres cientícos, normal-
mente en latín, se escribirán en cursiva, independientemente
del rango o categoría taxonómica. Ninguna palabra deberá
estar subrayada. Las guras, cuadros y tablas que se citen en
el texto vendrán numeradas en el orden de su citación.
La forma de citar los autores se atendrá a las siguientes
normas: se escribirá el primer apellido (o los dos si el prime-
ro es muy común) en mayúsculas seguido del año de la pu-
blicación. Si son dos los autores se pondrán los apellidos de
los dos unidos por la partícula & o por et y cuando sean más
de dos se indicará el primero seguido de & al. o et al. Por
ejemplo: (RUIZ & CARBAYO, 1989) en el primer caso; y
(LÓPEZ & al. 1999), en el segundo. El uso del paréntesis en
el texto se podrá realizar de varias formas: SINGER (1942),
si nos referimos a la obra del autor; SINGER (1942:27), si
deseamos referirnos a una página concreta de ese trabajo y
(SINGER, 1942), cuando se quiera dar una referencia justi-
cativa de una explicación o se halla tomado una frase o una
idea de un trabajo.
Los autores de táxones o taxones se indicarán sólo en
el epígrafe donde se describe o discute el taxon o taxón en
cuestión, como única vez, sin incluirlos en los resúmenes ni
en el resto del texto. Los nombres de los autores de taxones
vendrán abreviados de acuerdo con la publicación de KIRK
& ANSELL (1992) “Authors of fungal names”, CAB., o di-
rigiéndose a la siguiente dirección: www.speciesfungorum.
org. Los acrónimos de los herbarios donde se deposita el
material estudiado siguiendo a HOLMGREN & al. (1990),
Index herbariorum ed. 8, Regnum Veg. 120. La abreviatura
“al.” irá siempre en cursiva.
5.- Referencias a material de herbario
Las referencias a material de herbario depositado en mi-
cotecas particulares o públicas se hará con arreglo a la si-
guiente secuencia de datos:
PAÍS (si se hace referencia a material de diversos paí-
ses), PROVINCIA, municipio, paraje (se pueden hacer men-
ciones a entidades diferentes sean físicos o políticas como:
valle, sierra, playa, etc. o región, comarca, concello, parque
natural, etc.); siempre se ha de seguir el criterio de colocarlos
ordenados de mayor a menor supercie, coordenadas UTM
(a ser posible en cuadrícula de 1 km x 1 km), o si se emplea
un GPS las coordenadas que proporciona el aparato indican-
do primero la longitud y luego la latitud, la altitud en metros
sobre el nivel del mar (m.s.n.m.), el hábitat, la fecha de reco-
lección (p. e. 07-IV-2006), leg. (se indicarán el/los recolec-
tor/es de los especímenes, mediante las iniciales del nombre
de pila y primer apellido en minúsculas y redonda, habitual-
mente se citan un máximo de 3 recolectores, si fueran más
se cita el nombre del recolector principal seguido de las par-
tículas & al.), det. (se indicará el nombre del determinador
o identicador de la especie, si es distinto del recolector), el
ACRÓNIMO DEL HERBARIO O MICOTECA y número
del espécimen o muestra dentro del herbario.
Ejemplo de referencia de material herborizado
SALAMANCA: Linares de Riofrío, La Honfría, UTM
30T TK5295, 1.100 msnm, bajo Castanea sativa con
Quercus pyrenaica, 22-X-06, leg. J.M. Velasco & C.
González, det. J.M.Velasco, LAZA 1502.
6.- Normas para las ilustraciones
Todas las guras (fotografías y dibujos), cuadros y tablas
se numerarán correlativamente, acompañándose de un título
que explique su contenido. Las fotografías se enviarán por
correo electrónico en alta resolución (al menos de 1 Mb).
Las imágenes microscópicas deben acompañarse de una es-
cala que permita conocer las dimensiones de las estructuras
representadas.
7.- Referencias
Se incluirán solamante aquellas referencias que se citen
en el texto. Se citarán todos los autores de un trabajo siempre
que no sean más de cinco; si se supera esta cifra se mencio-
narán los cinco primeros y se añadirán las partículas & al.
Se ordenarán alfabéticamente por autores, con los traba-
jos de igual autoría ordenados de forma cronológica y en el
caso de pertenecer a los mismos autores y años distinguirlos
añadiendo letras minúsculas a continuación del año; si el pri-
mer autor viene acompañado de otros autores, para un mismo
año, se ordenarán de menos a más por número de autores.
Si se trata de trabajos publicados en revistas deberá ir
en cursiva el título de la revista. Si son libros es el título
del libro el que se escribirá en cursiva, indicando además el
nombre de la editorial y el de la ciudad de edición. Si se hace
referencia a un capítulo de un libro, es el título del libro el
que aparecerá en cursiva. Si las referencias son paginas webs
se escribirá en cursiva la correspondiente URL.
Se incluyen una serie de ejemplos diferentes para una
mayor aclaración.
Ejemplos de referencias bibliográcas e informáti-
cas:
ANDRÉS, J.; LLAMAS, B.; TERRÓN, A.; SÁNCHEZ
RODRÍGUEZ, J.A.; GARCÍA PRIETO, P. & al. (1999).
Guía de hongos de la Península Ibérica (Claves, Descrip-
ciones, Fotografías), 3ª ed. Celarayn. León.
BLACKWELL, M.; VILGALYS, R. & J.W. TAYLOR
(2005, febrero). Tree of live. Fungi. Web site: http://tolweb.
org/tree/Fungi
BON, M. (1988). Guía de campo de los hongos de Euro-
pa. Omega. Barcelona.
BON, M. & P. ROUX (2002). Le genre Gymnopilus P.
Karst. En Europe. Fungi non delineati, XVII. M. Candusso.
Alassio.
Bol. Micol. Lazarillo, 4: 88-90 (2009)90
BREITENBACH, J. & F. KRÄNZLIN (1984, 1986,
1991, 1995, 2000, 2005). Champignons de Suisse. Tomos 1
a 6. Mykologia. Lucerne.
CALONGE, F.D. & B. MARCOS (1992). Una variedad
nueva de Lysurus cruciatus (Lepr. & Mont.) LLoyd. Bol.
Soc. Micol. Madrid, 16:155-157.
DANIËLS,P.P. (2003). Números 2124-2178. En:
J.C.Hernández (ed.). Bases corológicas de Flora Micológi-
ca Ibérica. Números 2070-2178. Cuad. Trab. Flora Micol.
Ibér., 19: 104-165.
DE LUIS CALABUIG, E. (1992). Bioclima. En: Gómez,
J.M. (coord.). El libro de las dehesas salmantinas. Junta de
Castilla y León. Valladolid.
GARCÍA BLANCO, A.(2004a). Contribución al cono-
cimieto de los hongos de Castilla y León (III). El género
Scleroderma Pers. (1801). Bol. Asoc. Micol. Zamorana, 6:
21-30.
GARCÍA BLANCO, A. (2004b). Hongos hipogeos.
Contribución al conocimiento de algunas especies raras o
interesantes. Errotari, 1: 29-37.
MUÑOZ, J.A. (2005). Boletus s.l. (excl. Xerocomus).
Fungi Europaei, 2. M. Candusso. Alassio.
VALLE, C.J.; GARCÍA, P.; PÉREZ, S.; SÁNCHEZ, J.A.
& J. SÁNCHEZ. (2005). Setas de Salamanca. Diputación de
Salamanca. Salamanca.
VV.AA. (1968). Enciclopedia Salvat de las Ciencias.
Tomo 1: Vegetales. Salvat - Instituto Geográco de Agostini.
Pamplona.
Normas de publicación para el Boletín Micológico Lazarillo